一、普通光學顯微鏡觀察方法
(一)蘇木素-伊紅染色(HE 染色法)
石蠟組織切片的HE染色
1、取材組織塊,經固定后,常規石蠟包埋,4μm切片。
2、切片常規用二甲苯脫蠟,經各級乙醇至水洗:二甲苯(I)5min→二甲苯(Ⅱ)5min→100%乙醇2min→95%的乙醇1min→80%乙醇1min→75%乙醇1min→蒸餾水洗2min。
3、蘇木素染色5min,自來水沖洗。
4、鹽酸乙醇分化30s(提插數下)。
5、自來水浸泡15min或溫水(約50℃)5min。
6、置伊紅液2min。
7、常規脫水,透明,封片:95%乙醇(I)min→95%乙醇(Ⅱ)1min→100%乙醇(I)1min→100%乙醇(Ⅱ)1min→二甲苯石碳酸(3:1)1min→二甲苯(I)1min→二甲苯(Ⅱ)1min→中性樹脂封固。
(二)甲基綠-派諾寧染色法
1、新鮮取材組織固定液中4℃固定3~6小時。
2、直接轉入95%乙醇脫水和無水乙醇脫水,二甲苯透明,石蠟包埋。
3、切片經二甲苯脫蠟,梯度乙醇水化至蒸餾水。
4、置染色液中室溫下染片約 1h 。
5、取出切片,不經水洗,用濾紙吸干多余染液。
6、插入丙酮中迅速分化。
7、轉入丙酮二甲苯( 1 : 1 )稍洗。
8、 二甲苯透明 2 ~ 3 次。
9、 中性樹膠封固。
(三) Giemsa 染色
1、收集細胞( 1 × 106 ), PBS 洗 1 次。
2、用細胞涂片離心機制成細胞涂片。
3、甲醇固定 3 ~ 5min 。
4、入 Giemsa 稀釋染色液 15 ~ 30min ,冬天在 37 ℃溫箱中染色。
5、用磷酸鹽緩沖液分色,以鏡下控制為準。
6、涂片晾干后用中性樹膠封片。
(四)瑞氏( Wright )染色
1、收集細胞( 1 × 106 ), PBS 洗 1 次。
2、用細胞涂片離心機制成細胞涂片。
3、甲醇固定 3 ~ 5min 。
4、用 Wright 液染色 2min 。
5、入 Wright 磷酸緩沖液稀釋液 4 ~ 10min ,然后用蒸餾水沖洗。此時如果顏色較深,可 0.08 %醋酸分化數秒鐘。
6、直立晾干后,用中性樹膠封固。
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