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  •   囊性纖維化跨膜傳導調節因子(cystic fibrosis transmembrane conductance regulator, CFTR)是一種cAMP激活的ATP門控性ABC(ATP-binding cassette, ABC)轉運蛋白類離子通道蛋白,表達于氣道,消化道和生殖道上皮細胞的頂部質膜中。CFTR的功能喪失導致囊性纖維化(cystic fibrosis, CF),患者上皮HCO3-和Cl-的分泌受損,降低氣道表面液體(airway surface liquid, ASL)pH,并損害呼吸道宿主防御【1-3】。通過具有特定突變的CFTR通道增加陰離子分泌可改善CF患者的氣道宿主防御和肺功能【1,4】。但并非所有CFTR突變都適合這種方法,獨立于CFTR起作用以促進陰離子分泌的小分子離子通道則可以規避這些限制【5】。多項研究表明,肽或小分子離子通道、轉運蛋白和載體等可以促進CFTR缺陷細胞中的Cl-轉運和/或CFTR缺陷上皮細胞中電流電位的變化【6】。然而,目前尚不清楚這種方法是否可以改善宿主的氣道防御。

      兩性霉素B(AmB)是一種天然小分子抗真菌劑,其與甾醇(真菌細胞膜的組分)結合形成一價離子通道,導致真菌細胞一價離子(K +,Na +,H +和Cl-等)快速泄漏隨后死亡。當AmB與甾醇的摩爾比大于1時AmB會對人類產生毒性【7,8】,這些證據允許研究人員將AmB的通道活性與其細胞毒性合理地分離,使用低濃度的AmB形成離子通道,從而在CF患者的臨床實驗中有所運用。

    圖片.png

    兩性霉素(AmB)結構,圖片來源Wikipedia

      近日,伊利諾伊大學厄巴納-香檳分校的研究人員在 Nature 上發表題為Small molecule ion channels increase host defences in cystic fibrosis airway epithelia 的文章,報道了添加低濃度AmB可恢復CF患者氣道上皮細胞中ASL的pH,粘度和抗菌活性。實驗證明,AmB形成的非選擇性小分子離子通道可以通過獨立于CFTR的機制恢復CF患者氣道上皮細胞的宿主防御。

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      研究人員經實驗證明,低濃度的AmB不僅增加了由不同突變導致的CF患者氣道上皮細胞中ASL的pH并促進HCO3-分泌,同樣也增加了不攜帶CFTR突變的氣道上皮細胞ASL的pH和HCO3-分泌,盡管AmB缺乏離子選擇性,但AmB通道在功能上與驅動陰離子分泌的內源性外側蛋白質相互作用。隨后,研究人員測試了AmB對人氣道上皮細胞分化的原代培養物中宿主氣道的防御能力,結果發現CF氣道上皮培養物ASL粘度增加,抗菌活性降低,AmB的添加使CF上皮細胞中ASL對細菌殺傷力增強。

      在進一步的實驗中,研究人員發現CF患者上皮細胞中ASL的pH隨著AmB濃度的增加而增加但隨后會下降。于是研究人員選用了AmBisome(一種經FDA批準的脂質體制劑,含有1:2.5比例的AmB和膽固醇【9】),發現AmBisome在脂質體中引起HCO3-外排,添加AmBisome后使得CuFi-1上皮細胞(CFTR雜合突變株:G551D/ΔF508)中ASL的pH和HCO3-分泌增加,并且大范圍的AmBisome濃度增加依然增加ASL的pH。在CF豬模型的運用實例中【10】,通過添加AmBisome增加了CFTR-/-豬ASL的pH。

      綜上,AmB通道獨立于CFTR,轉運一價陰離子和陽離子,其能增加CF氣道上皮細胞HCO3-的分泌、增加ASL的pH并改善抗菌活性。此文及其前期一系列報道,揭示了AmB可作為一種非CFTR依賴的方法來治療CF患者,由于這種機制與CFTR活性無關,因此CFTR調節劑也有可能產生累加效應【4,11】。此外,AmB已經是臨床上批準的藥物,AmBisome制劑可以安全地輸送到肺部治療肺部真菌感染,而不會產生明顯的全身暴露【12,13】,這些結果可能對CF患者有益。

      參考文獻

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      4. Ramsey, B. W. et al. A CFTR potentiator in patients with cystic fibrosis and the G551D mutation. N. Engl. J. Med. 365, 1663–1672 (2011).

      5. Oliver, K. E., Han, S. T., Sorscher, E. J. & Cutting, G. R. Transformative therapies for rare CFTR missense alleles. Curr. Opin. Pharmacol. 34, 76–82 (2017).

      6. Koulov, A. V. et al. Chloride transport across vesicle and cell membranes by steroid-based receptors. Angew. Chem. Int. 42, 4931–4933 (2003).

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      8. Cioffi, A. G., Hou, J., Grillo, A. S., Diaz, K. A. & Burke, M. D. Restored physiology in protein-deficient yeast by a small molecule channel. J. Am. Chem. Soc. 137, 10096–10099 (2015).

      9. Monforte, V. et al. Nebulized liposomal amphotericin B prophylaxis for Aspergillus infection in lung transplantation: pharmacokinetics and safety. J. Heart Lung Transplant. 28, 170–175 (2009).

      10. Abou Alaiwa, M. H. et al. Repurposing tromethamine as inhaled therapy to treat CF airway disease. JCI Insight 1, e87535 (2016).

      11. Van Goor, F. et al. Rescue of CF airway epithelial cell function in vitro by a CFTR potentiator, VX-770. Proc. Natl Acad. Sci. USA 106, 18825–18830 (2009).

      12. Monforte, V. et al. Nebulized liposomal amphotericin B prophylaxis for Aspergillus infection in lung transplantation: pharmacokinetics and safety. J. Heart Lung Transplant. 28, 170–175 (2009).

      13. Ringden, O. et al. Efficacy of amphotericin B encapsulated in liposomes (AmBisome) in the treatment of invasive fungal infections in immunocompromised patients. J. Antimicrob. Chemother. 28, 73–82 (1991).


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