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  • 發布時間:2019-09-12 10:09 原文鏈接: P1噬菌體克隆在大腸桿菌宿主間的轉移

               

    實驗方法原理 從不同大腸桿菌菌株中獲得的 P1 噬菌體 DNA 的產量與質量取決于宿主菌的基因型和重組子中外源 DNA 的特定序列。將 P1 或 PAC 重組子轉化到不表達 Cre 重組酶的大腸桿菌菌株中有時可以解決低產或劣質的問題(如 NS3516; Sternberg et al. 1994)。
    實驗材料

    限制性內切核酸酶 閉環重組 P1 DNA 電轉感受態大腸桿菌細胞

    儀器、耗材

    瓊脂糖凝膠 LB 瓊脂平板 SOC 培養基 電穿孔儀

    實驗步驟

    一、材料

    1. 酶與緩沖液

    限制性內切核酸酶

    2. 凝膠

    瓊脂糖凝膠

    3. 培養基

    含 25 μg/ml 卡那霉素的 LB 瓊脂平板

    SOC 培養基

    含 25 μg/ml 卡那霉素的 TB 培養基

    4. 專用設備

    電穿孔儀

    5. 載體和菌株

    閉環重組 P1 DNA

    冷凍保存的電轉感受態大腸桿菌細胞(如 DH10B )

    二、方法

    1. 用無菌水將 2~3 μg P1 質粒 DNA 稀釋至 60 ng/μl。設一不含 P1 DNA 的對照樣品 (無菌水),在電穿孔時作為平行對照。.

    2. 將電轉感受態細胞置于冰上融化。預冷 0.1 cm 電穿孔杯。

    3. 將 20 μl 細胞與 1 μl P1 DNA 在預冷的電穿孔杯中混合。

    4. 將電穿孔儀設為 1.8 kV, 200 Ω,25 μF。

    5. 電擊細胞,最佳時間常數通常約為 5 ms。

    6. 立即向細胞懸液中加入 0.5 ml 預熱至 37℃ 的 SOC 培養基。將懸液轉移至一培養管中,37℃ 中度振蕩培養 1 h。

    7. 將 100 μl 的細胞懸液涂布于含 25 μg/ml 卡那霉素的 LB 平板上,37℃ 溫育過夜。

    8. 將 10~12 個菌落分別置于 11 ml 含 25 μg/ml 卡那霉素的 TB 培養液中。37℃ 劇烈振蕩,培養過夜。

    9. 制備 P1 DNA。

    10. 用不同限制性內切核酸酶進行酶切,經瓊脂糖凝膠電泳比較新提取的 DNA 與原始重組子 DNA 的酶切圖譜。

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