豚鼠耳緣剪口采血實驗
實驗材料豚鼠試劑、試劑盒枸櫞酸鈉儀器、耗材手術刀實驗步驟將耳消毒后，用銳器割破耳緣，在切口邊緣涂抹20%枸櫞酸鈉溶液，阻止血凝，則血可自切口自動流出，進入盛器。操作時，使耳充血效果較好。此法能采血0.5ml左右。......閱讀全文
豚鼠耳緣剪口采血實驗
實驗材料豚鼠試劑、試劑盒枸櫞酸鈉儀器、耗材手術刀實驗步驟將耳消毒后，用銳器割破耳緣，在切口邊緣涂抹20%枸櫞酸鈉溶液，阻止血凝，則血可自切口自動流出，進入盛器。操作時，使耳充血效果較好。此法能采血0.5ml左右。
豚鼠耳緣剪口采血實驗
實驗材料 豚鼠試劑、試劑盒 枸櫞酸鈉儀器、耗材 手術刀實驗步驟 將耳消毒后，用銳器割破耳緣，在切口邊緣涂抹20%枸櫞酸鈉溶液，阻止血凝，則血可自切口自動流出，進入盛器。操作時，使耳充血效果較好。此法能采血0.5ml左右。
豚鼠心臟采血實驗
實驗材料豚鼠儀器、耗材注射器實驗步驟取血前應探明心臟搏動最強部位，通常在胸骨左緣的正中，選心跳最明顯的部位作穿刺。針頭宜稍細長些，以免發生手術后穿刺孔出血。因豚鼠身體較小，一般可不必將動物固定在解剖臺上，而可由助手握住前后肢進行采血。成年豚鼠采血應不超過10ml為宜。?
豚鼠心臟采血實驗
實驗材料 豚鼠儀器、耗材 注射器實驗步驟 取血前應探明心臟搏動最強部位，通常在胸骨左緣的正中，選心跳最明顯的部位作穿刺。針頭宜稍細長些，以免發生手術后穿刺孔出血。因豚鼠身體較小，一般可不必將動物固定在解剖臺上，而可由助手握住前后肢進行采血。成年豚鼠采血應不超過10ml為宜。
豚鼠股動脈采血實驗
實驗材料豚鼠儀器、耗材注射器實驗步驟將動物仰位固定在手術臺上，減去腹股溝區的毛，麻醉后局部用碘酒消毒。切開長約2～3cm的皮膚，使股動脈暴露及分離，然后用鑷子提起股動脈，遠端結扎，近端用止血鉗夾住，在動脈中央剪一小孔，用無菌玻璃小導管或聚乙烯、聚四氟乙烯管插入，放開止血鉗，血液既由導管流出。一次可采
豚鼠股動脈采血實驗
實驗材料 豚鼠儀器、耗材 注射器實驗步驟 將動物仰位固定在手術臺上，減去腹股溝區的毛，麻醉后局部用碘酒消毒。切開長約2～3cm的皮膚，使股動脈暴露及分離，然后用鑷子提起股動脈，遠端結扎，近端用止血鉗夾住，在動脈中央剪一小孔，用無菌玻璃小導管或聚乙烯、聚四氟乙烯管插入，放開止血鉗，血液既由導管流出。一
實驗動物實驗標本的采集實驗——動物采血方法
實驗材料實驗動物試劑、試劑盒消毒液儀器、耗材注射器實驗步驟(1) 大鼠、小鼠的采血方法：①剪尾采血：適用于少量采血，如制作血涂片、白細胞計數等。動物麻醉后，將尾尖剪去約 5 mm, 待血液流出采集。也可用刀割破尾動脈或尾靜脈，讓血液自行流出。小鼠可每次采血約 0. 1 ml, 大鼠約 0.4 ml。
實驗動物給藥和采血方法（一）
1.割(剪）尾采血當所需血量很少時采用本法。固定動物并露出鼠尾。將尾部毛剪去后消毒，然后浸在45℃左右的溫水中數分鐘，使尾部血管充盈。再將尾擦干，用銳器（刀或剪刀）割去尾尖0.3-0.5cm，讓血液自由滴入盛器或用血紅蛋白吸管吸取，采血結束，傷口消毒并壓迫止血。也可在尾部作一橫切口，割破尾動脈或靜脈
動物血液采集實驗——豚鼠心臟采血法
實驗材料豚鼠儀器、耗材75％ 酒精棉花碘酒棉花剪刀5 ml 滅菌注射器針頭滅菌小試管燒杯（盛自來水用）實驗步驟1. 助手用左手從背面夾持動物頸部，將動物提起，并翻轉身，使腹部向上，用大拇指鉤住下頜部，食指與中指夾住其左前腿并拉直，便其左胸部露出，右手在下方將動物托起，手心向上，并用手指固定兩條后腿。
實驗動物實驗標本的采集實驗
(1) 大鼠、小鼠的采血方法：①剪尾采血：適用于少量采血，如制作血涂片、白細胞計數等。動物麻醉后，將尾尖剪去約 5 mm, 待血液流出采集。也可用刀割破尾動脈或尾靜脈，讓血液自行流出。小鼠可每次采血約 0. 1 ml, 大鼠約 0.4 ml。②眼眶后靜脈叢采血：一手拇指及食指抓住鼠兩耳之
實驗動物血液標本的采集
實驗概要本文介紹了實驗動物(小鼠和大鼠、豚鼠、兔、猴等)血液標本的采集方法。實驗步驟1. 小鼠和大鼠血液標本的采集?? 1) 割(剪)尾采血當所需血量很少時采用本法。固定動物并露出鼠尾。將尾部毛剪去后消毒，然后浸在45℃左右的溫水中數分鐘，使尾部血管充盈。再將尾擦干，用銳器(刀或剪刀)割去尾尖0
實驗動物的取血實驗
實驗方法原理實驗動物的采血方法很多，按采血部位不同，可分為：尾部采血(割、剪鼠尾)，鼠尾刺血法，眼眶靜脈叢采血，斷頭采血，心臟采血，頸靜脈(動脈)采血，腹主動脈采血，股動(靜)脈采血，耳緣剪口采血，耳靜脈采血，后肢外側小隱靜脈采血，前肢內側皮下頭靜脈采血，毛細血管采血，翼下采血等。實驗材料家兔狗豚鼠
狗和貓耳緣靜脈取血實驗
實驗材料 狗 貓儀器、耗材 小動物實驗臺注射器酒精實驗步驟 采血量較少時可用此法。用針頭刺破靜脈采血或直接用空針抽取。
狗和貓耳緣靜脈取血實驗
實驗材料狗貓儀器、耗材小動物實驗臺注射器酒精實驗步驟采血量較少時可用此法。用針頭刺破靜脈采血或直接用空針抽取
實驗動物采血完全指南
采血方法的選擇，決定于實驗的目的所需血量以及動物種類。凡用血量較少的檢驗如紅、白細胞計數、血紅蛋白的測定，血液涂片以及酶活性微量分析法等，可刺破組織取毛細血管的血。當需血量較多時可作靜脈采血。靜脈采血時，若需反復多次，應自遠離心臟端開始，以免發生栓塞而影響整條靜脈。例如，研究毒物對肺功能的影響、血液
三七剪口的介紹
剪口的三七總皂苷含量是三七地下部分最高的部位，廣泛用于工業提取三七總皂苷。三七剪口每年長出一節，節上有芽苞，呈暗綠色，形狀彎曲似鸚哥嘴狀，故俗稱“鸚哥嘴”，新生的莖就從“鸚哥嘴”背部彎凸處長出。莖葉脫落后，節上留有一凹窩，即“莖痕”。三七生長年限越長，莖痕或剪口節數越多，剪口也就越長，由此可判斷
三七剪口的功效介紹
三七剪口總皂苷的含量，要比主根高2%左右，是三七地下部分皂苷含量最高的部分，功效與三七主根是一樣的，都具有散瘀止血，消腫定痛之功效。主治咯血，吐血，衄血，便血，崩漏，外傷出血，胸腹刺痛，跌仆腫痛。《本草綱目》云：“三七止血，散血，定痛。” 《玉揪藥解》云：“三七和營止血，通脈行瘀，行瘀血而斂新血
動物實驗基本技術2
第五節 實驗動物的采血法實驗研究中，經常要采集實驗動物的血液進行常規質量檢測、細胞學實驗或進行生物化學分析，故必須掌握正確的采集血液的技術。采血方法的選擇，主要決定于實驗的目的和所需血量以及動物種類。一、大鼠、小鼠的采血方法(一)剪尾采血：需血量很少時常用本法，如作紅、白細胞計數、血紅蛋白測定、制作
動物實驗基本技術2
第五節 實驗動物的采血法實驗研究中，經常要采集實驗動物的血液進行常規質量檢測、細胞學實驗或進行生物化學分析，故必須掌握正確的采集血液的技術。采血方法的選擇，主要決定于實驗的目的和所需血量以及動物種類。一、大鼠、小鼠的采血方法(一)剪尾采血：需血量很少時常用本法，如作紅、白細胞計數、血紅蛋白測定、制作
動物實驗基本技術1
第一節 實驗動物的抓取和固定在進行實驗時，為了不損傷動物的健康，不影響觀察指標，并防止被動物咬傷，首先要限制動物的活動，使動物處于安靜狀態，工作人員必須掌握合理的抓取固定方法。抓取動物前，必須對各種動物的一般習性有所了解。操作時要小心仔細、大膽敏捷、熟練準確、不能粗暴，不能恐嚇動物，同時，要愛惜動物
尿的分泌和收集
實驗概要學習用膀胱套管引流的方法，觀察不同生理因素對動物尿量的影響。加深對尿生成調節的理解。實驗原理尿是血液流過腎單位時經過腎小球濾過，腎小管重吸收和分泌而形成的，凡對這些過程有影響的因素都可影響尿的生成。腎小球的濾過作用取決于腎小球的有效濾過壓，其大小取決于腎小球毛細血管血壓，血漿的膠體滲透壓和腎
實驗動物編號的常規方法
常用的標記法有染色、耳緣剪孔、烙印、號牌等方法。（一）顏料涂染這種標記方法在實驗室最常使用，也很方便。經常應用的涂染化學藥品有：①、涂染紅色：0.5%中性紅或品紅溶液。 ②、涂染黃色：3～5%苦味酸溶液。 ③、黑色：煤焦油的酒精溶液。 ④、涂染咖啡色：2%硝酸銀溶液。標記時用毛筆或棉簽蘸取上述
實驗動物編號的常規方法
常用的標記法有染色、耳緣剪孔、烙印、號牌等方法。（一）顏料涂染這種標記方法在實驗室最常使用，也很方便。經常應用的涂染化學藥品有：①、涂染紅色：0.5%中性紅或品紅溶液。 ②、涂染黃色：3～5%苦味酸溶液。 ③、黑色：煤焦油的酒精溶液。 ④、涂染咖啡色：2%硝酸銀溶液。標記時用毛筆或棉簽蘸取上述
Elisa實驗中動物體液采集方法分析詳解
Elisa試驗是一種敏感性高，特異性強，ELISA試劑盒重復性好的實驗診斷方法。由于其試劑穩定、易保存，操作簡便，結果判斷較客觀等因素，已廣泛應用在免疫學檢驗的各領域中。那么Elisa實驗中動物體液該如何采集呢?一、血液的采集常用的采血方法有割（剪）尾采血、眼眶靜脈叢采血、斷頭采血、心臟采血、頸靜脈
小鼠ELISA試劑盒樣本取血操作步驟及注意事項
大鼠、小鼠ELISA試劑盒檢測中，經常有客戶采用鼠類的血清，血漿做檢測樣本，但是收集樣本復雜，本章小編就根據大鼠，小鼠ELISA試劑盒樣本取血及注意事項。以小鼠為例：1 剪尾采血? 小鼠每次采血量0.1ml，大鼠每次采血量0.3-0.5ml 左手拇指和食指從背部抓住鼠頸部皮膚，將鼠頭朝下，鼠保定后將
豚鼠離體氣管標本制備實驗
實驗材料 豚鼠儀器、耗材 木棍Kerbs營養溶液手術剪實驗步驟 1. 氣管連環標本 豚鼠1只，體重500g，用木槌擊斃，立即從腹面正中切開皮膚和皮下組織，細心分離出氣管，自甲狀軟骨下剪下整段氣管，置于盛有Kerbs營養溶液的平皿中，剪除氣管周圍組織。從軟骨環之間由前向后和由后向前進行交叉橫切
豚鼠離體氣管標本制備實驗
實驗材料豚鼠儀器、耗材木棍Kerbs營養溶液手術剪實驗步驟1. 氣管連環標本 豚鼠1只，體重500g，用木槌擊斃，立即從腹面正中切開皮膚和皮下組織，細心分離出氣管，自甲狀軟骨下剪下整段氣管，置于盛有Kerbs營養溶液的平皿中，剪除氣管周圍組織。從軟骨環之間由前向后和由后向前進行交叉橫切，均不完全切斷
豚鼠背中足靜脈取血實驗
實驗材料 豚鼠儀器、耗材 小動物實驗臺注射器酒精實驗步驟 固定動物，將其右或左后關節伸直，將動物腳背面用酒精消毒，找出背中足靜脈后，一手拉住豚鼠的趾端，一手用注射器刺入靜脈。拔針后立即出血，呈半球狀隆起。采取后應壓迫止血
豚鼠背中足靜脈取血實驗
實驗材料豚鼠儀器、耗材小動物實驗臺注射器酒精實驗步驟固定動物，將其右或左后關節伸直，將動物腳背面用酒精消毒，找出背中足靜脈后，一手拉住豚鼠的趾端，一手用注射器刺入靜脈。拔針后立即出血，呈半球狀隆起。采取后應壓迫止血
實驗動物常用的標記法
常用的標記法有染色、耳緣剪孔、烙印、號牌等方法。二）烙印法用刺數鉗在動物耳上刺上號碼，然后用棉簽蘸著溶在酒精中的黑墨在刺號上加以涂抹，烙印前最好對烙印部位預先用酒精消毒。（三）針刺法用七號或八號針頭蘸取少量碳素墨水，在耳部、前后肢以及尾部等處刺入皮下，在受刺部位留有一黑色標記。該法適用于大小鼠、豚鼠