大鼠和小鼠尾靜脈注射技巧與心得
關鍵步驟是:1. 將小鼠固定好,將尾巴拉直，繃緊，這是成功的第一步。小鼠性情較溫順，一般不會咬人，比較容易抓取固定。通常用右手提起小鼠尾巴將其放在鼠籠蓋或其它粗糙表面上，在小鼠向前掙扎爬行時，用左手拇指和食指捏住其雙耳及頸部皮膚，將小鼠置于左手掌心、無名指和小指夾其背部皮膚和尾部，即可將小鼠完全固定。在一些特殊的實驗中，如進行尾靜脈注射時，可使用特殊的固定裝置進行固定,如尾靜脈注射架或粗的玻璃試管。如要進行手術或心臟采血應先行麻醉再操作,如進行解剖實驗則必須先行無痛處死后再進行。或者用這個方法：1 小鼠要固定好，自制一個籠子，前面通氣，中間最好有一個擋板，讓小鼠不能后退，筒子后面開一個口，尾巴從這里出來，這樣固定牢靠；2、注射前尾巴用稍熱的水浸泡幾分鐘，有利于注射；3、先遠后盡，不要一開始就從尾根部，那樣失敗了不好辦；4、進血管后注意保持穩定，針尖很容易刺穿血管的。至于能否穿進，個人手感如何，全靠自己啦。多練習，一定很快掌握的，......閱讀全文
大鼠和小鼠尾靜脈注射技巧與心得
關鍵步驟是:1. 將小鼠固定好,將尾巴拉直，繃緊，這是成功的第一步。小鼠性情較溫順，一般不會咬人，比較容易抓取固定。通常用右手提起小鼠尾巴將其放在鼠籠蓋或其它粗糙表面上，在小鼠向前掙扎爬行時，用左手拇指和食指捏住其雙耳及頸部皮膚，將小鼠置于左手掌心、無名指和小指夾其背部皮膚和尾部，即可將小鼠完全固定
大鼠和小鼠尾靜脈注射技巧
1. 將小鼠固定好,將尾巴拉直，繃緊，這是成功的第一步。小鼠性情較溫順，一般不會咬人，比較輕易抓取固定。通常用右手提起小鼠尾巴將其放在鼠籠蓋或其它粗糙表面上，在小鼠向前掙扎爬行時，用左手拇指和食指捏住其雙耳及頸部皮膚，將小鼠置于左手掌心、無名指和小指夾其背部皮膚和尾部，即可將小鼠完全固定。在一些非凡
體內轉染之小鼠尾靜脈注射技巧
1.小鼠的固定最好使用小鼠固定器，前部有氣孔保證小鼠呼吸，后部可以將尾部拉出，不要讓小鼠在固定器中有太多活動空間， 如空間較大，可加入一些填充物，防止小鼠在注射時亂動。2.尾靜脈的準備可以將小鼠尾部在50℃左右溫水浸浴2分鐘，以擴張靜脈。3.尾靜脈的選擇小鼠尾部有3條尾靜脈。背部1天，兩側各1條。由
小鼠尾靜脈注射方法
實驗材料 小鼠儀器、耗材 大培養皿注射器酒精棉實驗步驟 在靠近實驗臺邊緣處, 用大培養皿扣住小鼠, 左手抓住小鼠尾巴, 用酒精棉球擦尾巴, 可見到兩側靜脈; 注射前應確認針管內無氣泡, 注射時由尾尖開始,順向刺入。失敗后再逐漸移向根部重刺, 若準確刺入靜脈內, 推進時無阻力, 一般可注入0.1—0.
小鼠尾靜脈注射方法
實驗材料小鼠儀器、耗材大培養皿注射器酒精棉實驗步驟在靠近實驗臺邊緣處, 用大培養皿扣住小鼠, 左手抓住小鼠尾巴, 用酒精棉球擦尾巴, 可見到兩側靜脈; 注射前應確認針管內無氣泡, 注射時由尾尖開始,順向刺入。失敗后再逐漸移向根部重刺, 若準確刺入靜脈內, 推進時無阻力, 一般可注入0.1—0.5ml
尾靜脈注射快速入門技巧
?動物實驗當中，小鼠給藥的方式有多重，常見的有灌胃，腹腔，皮下，尾靜脈，飲食等。相比于灌胃、皮下，腹腔等給藥方法，尾靜脈注射可能是相對有難度的一種給藥方式。對于新手來說，尾靜脈難以操作成功。但是通過合適的方法，多加練習，也能輕松掌握！?固定裝置很重要?注意！尾靜脈注射固定裝置很重要，這是成功的首要條
如何解決大鼠尾靜脈注射比小鼠還難的問題？
其實大鼠尾靜脈注射步驟和小鼠基本類似，只是......?因為大鼠，個體更大，難固定、易掙扎；尾巴顏色深，不易辨別血管；尾巴質地更粗糙，扎針力度要更大；?因此大鼠尾靜脈注射操作難度更大。如下圖分別為小鼠和大鼠的尾巴，可見大鼠尾巴的質地粗糙，難辨別血管的特點：?小鼠尾巴（左）和大鼠尾巴（右）??大鼠尾靜
大小鼠尾靜脈注射難點指導
實驗動物中采用的給藥方法眾多，根據藥物性質和實驗目的不同，需要采用不同的給藥方式，如上一期介紹的灌胃、腹腔、皮下注射及靜脈注射給藥，在這幾種給藥方式中尾靜脈給藥難度最大，卻也是我們不可或缺的實驗技能。今天，就和大家分享下尾靜脈注射的技巧。本次文章內容豐富全面，主要分為2部分，尾靜脈注射基本步驟和技術
ZL02B大鼠尾靜脈注射顯像儀
ZL-02B大鼠可視尾靜脈注射儀是用于大鼠尾注射的一款儀器，以往給大鼠注射都是靠盲打，靠經驗，對科研新手來說極其困難，有了大鼠尾靜脈注射儀，可以大大提高注射效率，該儀器可以顯示出尾部血管位置，可看到針頭注射動作，裝有自動壓尾裝置，實驗人員一個人既可操作。詳情介紹：1、注射儀尺寸：275*160*12
大鼠、小鼠剪尾尖取血實驗
實驗材料 大鼠 小鼠儀器、耗材 小動物實驗臺注射器酒精實驗步驟 將動物固定或麻醉后，露出鼠尾，將尾巴置于45℃～50℃熱水中浸泡數分鐘，使血管擴張。擦干鼠尾后，將尾尖剪去1～2mm（小鼠）或5mm（大鼠）。從尾根部向尾尖部按摩，血即從斷端流出。
大鼠、小鼠針刺尾靜脈取血實驗
實驗材料 大鼠 小鼠試劑、試劑盒 酒精棉球儀器、耗材 注射器實驗步驟 先固定動物，用酒精棉球消毒尾部，然后對準尾尖部向上數厘米處的靜脈用注射針刺入后立即拔出。采血后用局部壓迫、燒烙等方法進行止血。
大鼠、小鼠剪尾尖取血實驗
實驗材料大鼠小鼠儀器、耗材小動物實驗臺注射器酒精實驗步驟將動物固定或麻醉后，露出鼠尾，將尾巴置于45℃～50℃熱水中浸泡數分鐘，使血管擴張。擦干鼠尾后，將尾尖剪去1～2mm（小鼠）或5mm（大鼠）。從尾根部向尾尖部按摩，血即從斷端流出。
大鼠、小鼠針刺尾靜脈取血實驗
實驗材料大鼠小鼠試劑、試劑盒酒精棉球儀器、耗材注射器實驗步驟先固定動物，用酒精棉球消毒尾部，然后對準尾尖部向上數厘米處的靜脈用注射針刺入后立即拔出。采血后用局部壓迫、燒烙等方法進行止血。
基本方案1－尾靜脈注射傳遞重組腺病毒到小鼠肝臟
實驗材料成年小鼠試劑、試劑盒乙醇重組腺病毒懸液儀器、耗材帶鐵絲蓋的鼠籠加熱燈小鼠限制器棉紗店注射器實驗步驟1.一個鼠籠裝 6 只小鼠，加熱燈置鐵絲蓋上方 6~10in(15~25 cm) 給小鼠取暖。觀察小鼠，約 5 min 后，它們會在角落里縮做一團，準備注射。不要在角落的位置照射小鼠。2.取一只
大小鼠靜脈注射實驗
實驗材料 大鼠 小鼠儀器、耗材 注射器實驗步驟 一般采用尾靜脈注射，鼠尾靜脈有3根，兩側及背側各一根，左右兩側尾靜脈較易固定，應優先選擇。注射前先將動物固定在鼠筒或玻璃罩內，使鼠尾露出，在45℃～50℃熱水中浸泡，或用酒精擦拭，使血管擴張。用拇指和食指捏住尾根部，再以無名指和小指夾住尾端部，用中指從
大小鼠靜脈注射實驗
靜脈注射（Intravenous injection）是一種醫療方法，可以用于把血液、藥液、營養液等液體物質直接注射到靜脈中。實驗方法原理鼠性情較溫順，一般不會咬人，比較容易抓取固定。通常用右手提起小鼠尾巴將其放在鼠籠蓋或其它粗糙表面上，在小鼠向前掙扎爬行時，用左手拇指和食指捏住其雙耳及頸部皮膚，將
大鼠與小鼠肥胖模型飼料和造模注意事項
一、大鼠小鼠肥胖模型飼料分類和選擇大鼠和小鼠的肥胖模型飼料有很多種，如何選擇所要使用的模型飼料呢，首先要了解模型飼料的分類。從使用的原料角度，模型飼料分為兩類：日糧型，純化型⒈日糧型是用普通飼料（所謂“基礎飼料”）按一定比例與脂肪、蛋白質等原料混合而成，特點是成本和價格較低，缺點是其中有大量、甚至未
Hamilton微量注射器在大鼠、小鼠等實驗動物注射上的應用...
Hamilton微量注射器在大鼠、小鼠等實驗動物注射上的應用方法和注射技巧1. 皮下注射：皮下注射較為簡單，一般都取背部及后腿皮下。小鼠通常在背部皮下注射，將皮膚拉起，注射針刺入皮下，把針尖輕輕向左右擺動，容易擺動則表明已刺入皮下，然后注射藥物。拔針時，以手指捏住針刺部位，可防止藥液外漏。熟練者可把
冰凍切片的制作技巧及心得（一）
下面發一個有關冰凍切片制作的資料，來自于國外病理醫生的經驗和心得，現翻譯過來供大家參考，歡迎提出不同的見解。冰凍切片技術1.從鋒利的刀片開始我發現使用新的鋒利的刀片時常常做出高質量的片子。我覺得在醫療場合中某些盡量省錢的做法顯得有些因小失大。一般我對每位患者的標本都使用一組新的刀片，當片子的質量開始
大小鼠的注射技術指導
尾靜脈注射是大鼠最常用的給藥方式之一，然而有時候如藥代動力學實驗我們需要在尾靜脈進行多次血液樣品的采集，那么若進行尾靜脈給藥便不可取；另外有時候不少同學經常把尾巴都快打爛了，卻依然沒成功，此時我們就得尋找新的靜脈繼續注射了。往期我們已介紹了大鼠的尾靜脈注射方法，本期就為大家介紹一條新的又很實用的靜脈
實驗動物的編號、抓取和固定方法
1、實驗動物的編號實驗時，為了分組和辨別的方便，常需事先為實驗動物進行編號。常用的編號方法如下：1）染料標記法：常用染料——紅色染料：5％中性紅或品紅液；黃色染料：3%～5％苦味酸溶液；咖啡色染料：2％硝酸銀溶液；黑色染料：煤焦油的乙醇溶液。標記規則——根據實驗動物被毛顏色的不同選擇不同化學藥品涂染
小鼠大鼠的采血方法
割（剪）尾采血 當所需血量很少時采用本法。固定動物并露出鼠尾。將尾部毛剪去后消毒，然后浸在45℃左右的溫水中數分鐘，使尾部血管充盈。再將尾擦干，用銳器(刀或剪刀)割去尾尖0.3～0.5cm，讓血液自由滴入盛器或用血紅蛋白吸管吸取，采血結束，傷口消毒并壓迫止血。也可在尾部作一橫切口，割破尾動脈
共聚焦顯微鏡使用技巧與心得（一）之－熒光原理篇
工欲善其事必先利其器，想用好共聚焦顯微鏡光會用操作可不行，那永遠不可能成為“共聚焦達人”，要想成為“達人“必先懂得原理，好吧，開始啦。什么是熒光？熒光：熒光現象是物質在光的照射下所產生的發光現象。首先熒光是一種光致發光現象，熒光物質必須是在光的照射下才能發光。否則就是其他的發光現象而不是熒光。例如夜
實驗動物接種途徑和接種方法試驗——靜脈接種
實驗材料實驗動物試劑、試劑盒病毒試劑儀器、耗材注射器實驗步驟靜脈接種。可造成病毒全身性感染，可觀察病毒的致病性或機體對病毒的清除機制。(1) 小鼠、大鼠的靜脈注射：常采用尾靜脈注射。鼠尾靜脈共有 3 根，左右兩側和背側各 1根．兩側尾靜脈比較容易固定，常被采用。(2) 豚鼠的靜脈注射：一般采用前肢皮
老藥新用或可治療小鼠與大鼠心臟損傷
中新網北京8月27日電 (記者 孫自法)施普林格·自然旗下專業學術期刊《自然-心血管研究》最新發表一篇生物學論文稱，研究表明，常用于治療多發性硬化癥的藥物醋酸格拉替雷(Glatiramer-acetate)，可在小鼠和大鼠中修復心臟病發作或心力衰竭后的心臟損傷。該論文介紹，心力衰竭是全球發病率和死亡
老藥新用或可治療小鼠與大鼠心臟損傷
施普林格·自然旗下專業學術期刊《自然-心血管研究》最新發表一篇生物學論文稱，研究表明，常用于治療多發性硬化癥的藥物醋酸格拉替雷(Glatiramer-acetate)，可在小鼠和大鼠中修復心臟病發作或心力衰竭后的心臟損傷。 該論文介紹，心力衰竭是全球發病率和死亡率的一個主要原因，過去的研究強調
大鼠、小鼠心臟取血實驗
實驗材料大鼠小鼠試劑、試劑盒酒精棉球儀器、耗材小動物實驗臺注射器酒精實驗步驟先將動物仰臥固定，左手食指在左側第3～4肋間觸到心尖搏動最強處，右手用連有針頭的注射器在此穿刺。由于心臟跳動血液進入注射器。小鼠約0.5～0.6ml，大鼠約0.8～1.2ml。
大鼠、小鼠斷頭取血實驗
實驗材料 大鼠 小鼠試劑、試劑盒 酒精棉球儀器、耗材 小動物實驗臺注射器酒精剪刀實驗步驟 這需要二人配合操作，采血者用左手將大（小）鼠的頭頸部握緊，右手抓住軀干和后肢，將頸部暴露。助手用剪刀將鼠頸剪斷（用力要大），采血者應迅速將大（小）鼠倒置，讓血滴入容器。此方法用于實驗結束后血液采集量大時。
大鼠、小鼠心臟取血實驗
實驗材料 大鼠 小鼠試劑、試劑盒 酒精棉球儀器、耗材 小動物實驗臺注射器酒精實驗步驟 先將動物仰臥固定，左手食指在左側第3～4肋間觸到心尖搏動最強處，右手用連有針頭的注射器在此穿刺。由于心臟跳動血液進入注射器。小鼠約0.5～0.6ml，大鼠約0.8～1.2ml。
大鼠、小鼠斷頭取血實驗
實驗材料大鼠小鼠試劑、試劑盒酒精棉球儀器、耗材小動物實驗臺注射器酒精剪刀實驗步驟這需要二人配合操作，采血者用左手將大（小）鼠的頭頸部握緊，右手抓住軀干和后肢，將頸部暴露。助手用剪刀將鼠頸剪斷（用力要大），采血者應迅速將大（小）鼠倒置，讓血滴入容器。此方法用于實驗結束后血液采集量大時