做WB時SDSPAGE膠凝固后多長時間上樣最好
配膠時，建議濃縮膠室溫凝固20-30分鐘后，再加分離膠，室溫凝固2-3小時后再用效果佳，如果當天配完不用，需塑料薄膜手套之類的將其包好，放置 4°冰箱過夜，第二天即用，不建議時間過長使用！......閱讀全文
做WB時SDSPAGE膠凝固后多長時間上樣最好
配膠時，建議濃縮膠室溫凝固20-30分鐘后，再加分離膠，室溫凝固2-3小時后再用效果佳，如果當天配完不用，需塑料薄膜手套之類的將其包好，放置 4°冰箱過夜，第二天即用，不建議時間過長使用！
SDSPAGE膠制備
一. 實驗原理： SDS-PAGE是對蛋白質進行量化，比較及特性鑒定的一種經濟、快速、而且可重復的方法。該法是依據混合蛋白的分子量不同來進行分離的。 SDS是一種去垢劑，可與蛋白質的疏水部分相結合，破壞其折疊結構，并使其廣泛存在于一個廣泛均一的溶液中。SDS蛋白質復合物的長度與其分子量成正比。在樣
SDSPAGE膠的干燥
凝膠干燥時遇到的主要問題是凝膠的變形和破裂。將凝膠放在Whatman 3MM濾紙上可防止干燥凝膠變形，但凝膠是否破裂取決于凝膠的厚度和干燥器的質量，因此，應盡量使用薄膠并使凝膠干燥器處于良好狀態，使其真空壓力波動極少。(1)試劑與配制：固定液：冰醋酸:甲醇:水（10:20:70）(2)電泳后的凝膠用
SDSPAGE膠的干燥方法
凝膠干燥時遇到的主要問題是凝膠的變形和破裂。將凝膠放在Whatman 3MM濾紙上可防止干燥凝膠變形，但凝膠是否破裂取決于凝膠的厚度和干燥器的質量，因此，應盡量使用薄膠并使凝膠干燥器處于良好狀態，使其真空壓力波動極少。(1)試劑與配制：固定液：冰醋酸:甲醇:水（10:20:70）(2)電泳后的凝膠用
如何配制sdspage梯度膠
操作步驟（ 1 ）在制板支架上置一專用有機玻璃槽，將固定好的玻璃板下部插入槽內，中部用兩個文具夾固定在支架豎板上。在槽內倒入已充分溶化的瓊脂，冷凝后封閉膠腔底部。（ 2 ）用直徑約 2mm 的聚乙烯管連接好梯度混合器、恒流泵、凝膠模。（ 3 ） 30% 膠液的配制取 50ml 燒杯一只，加凝膠貯液①
SDSPAGE梯度膠怎么配置
操作步驟（ 1 ）在制板支架上置一專用有機玻璃槽，將固定好的玻璃板下部插入槽內，中部用兩個文具夾固定在支架豎板上。在槽內倒入已充分溶化的瓊脂，冷凝后封閉膠腔底部。（ 2 ）用直徑約 2mm 的聚乙烯管連接好梯度混合器、恒流泵、凝膠模。（ 3 ） 30% 膠液的配制取 50ml 燒杯一只，加凝膠貯液①
WB上層膠怎么算跑好了
檢測器檢測。理論上，從普通培養基中收集分泌蛋白，此時對細胞生長條件的影響最小，是最佳的實驗條件：但是這存在隱憂。因為含血清的培養基中含有非常豐富的BSA（牛血清白蛋白）之類的蛋白質，除非你進一步分離純化，否則直接用這種樣品去WB會有非常大的麻煩，尤其當你的蛋白在60-46kDa之間的時候：用“任何”
電泳跑膠SDSPAGE的定義
SDS-PAGE即聚丙烯酰氨凝膠電泳詳細資料如下：聚丙烯酰胺凝膠電泳是網狀結構，具有分子篩效應，它有兩種形式，一種是非變性聚丙烯酰胺凝膠，蛋白質在電泳中保持完整的狀態，蛋白在其中依三種因素分開：蛋白大小，形狀和電荷。而SDS-PAGE僅根據蛋白分子量亞基的不同而分離蛋白。這個技術首先是1967年由s
電泳跑膠SDSPAGE的定義
聚丙烯酰胺凝膠電泳是網狀結構，具有分子篩效應，它有兩種形式，一種是非變性聚丙烯酰胺凝膠，蛋白質在電泳中保持完整的狀態，蛋白在其中依三種因素分開：蛋白大小，形狀和電荷。而SDS-PAGE僅根據蛋白分子量亞基的不同而分離蛋白。這個技術首先是1967年由shapiro建立，他們發現在樣品介質和丙烯酰胺凝膠
wb下層膠不平整會有什么影響
v是有較大影響的，膠體薄的位置防水性能與防潮性能較差，其他性能也會隨之降低。膠體略厚的位置，很難用針探測元器件，零部件在出現故障后，不容易找出來。膠體固化后高低不平，還會導致電器性能不穩定，在運作過程中，零部件即使用螺絲緊固，膠液層厚的位置依然會出現輕度傾斜，長期使用會增加電器出現故障幾率。
wb膠堵孔是什么原因
wb膠堵孔原因如下：1、膠的水分過分蒸發。2、濃縮膠凝膠太快。3、錯用梳子。4、梳子不干凈。
SDSPAGE凝膠－自配？配膠試劑盒？預制膠？
蛋白質印跡的發明者一般認為是美國斯坦福大學的喬治·斯塔克(George Stark)。在尼爾·伯奈特(Neal Burnette)于1981年所著的《分析生物化學》(Analytical Biochemistry)中首次被稱為Western Blot。蛋白免疫印跡( Western Blot)
SDSPAGE蛋白電泳配膠不凝固
我分析原因是過硫酸胺失效，過硫酸氨最好是先用現配，如果怕麻煩而且跑膠的頻率很高的話，那么用完之后ap要放在4℃保存，一周之后必須新配。另外可以適當的增加temed的量，從5μl提高到8μl并無大礙。如你所說，是不是就是ap失效呢，還有，我強烈建議你復查一邊濃縮膠，分離膠各各buffer的組分是否配制
固化及膠凝材料粘度檢測方法
應用各種材料，如環氧樹脂或其他復合材料樹脂、慢固化膠粘劑、明膠或烴類凝膠。??測試設備儀器:粘度計或流變儀主軸:任意標準主軸的選擇，或者是一次性的主軸和室容易清理。配件:多種選擇:小樣品適配器,tc - 550 ap可編程浴,Thermosel?可編程序控制器速度:各種可能性:100到0.01RPM
固化及膠凝材料粘度檢測方法
應用 各種材料，如環氧樹脂或其他復合材料樹脂、慢固化膠粘劑、明膠或烴類凝膠。 測試設備 儀器:粘度計或流變儀 主軸:任意標準主軸的選擇，或者是一次性的主軸和室容易清理。 配件:多種選擇:小樣品適配器,tc -550 ap可編程浴,Thermosel?可編程
蛋白質膠凝作用的原理
蛋白質的膠凝作用是溶膠或溶液在適當條件下轉變為凝膠(凍膠)的過程。 可看作溶膠聚沉過程中的一個階段。膠凝時膠體失去聚結穩定性，但仍有動力學穩定性，是特殊的半固體狀態，膠體質點相互聯結，形成網狀結構，結構空隙中填滿液體，不生成沉淀。膠體質點形狀不對稱和親水性強時，在強電解質作用下可以發生膠凝。憎
固化或膠凝材料粘度檢測方法
應用各種材料，如環氧樹脂或其他復合材料樹脂、慢固化膠粘劑、明膠或烴類凝膠。?測試設備儀器:粘度計或流變儀主軸:任意標準主軸的選擇，或者zui好是一次性的主軸和室容易清理。配件:多種選擇:小樣品適配器,tc?-?550?ap?可編程浴,Thermosel?可編程序控制器速度:各種可能性:100?到?0
wb實驗分離膠立馬就凝固了行么
透明膠郵票粘在一起，要分而不損傷郵票的確是件很麻煩的事。用電吹風或水泡等也不失為好辦法。但剛開始不要盲目用電吹風或水泡等辦法用在郵票上，以免損傷郵票。你可以用透明膠粘在和郵票差不多的廢紙上(最好是撕下廢棄無用的郵票邊紙上)做個試驗，先用電吹風吹，如果沒有效，再用水泡等方法。試驗成功取得經驗后，再用到
蛋白質SDSPAGE電泳分離膠和濃縮膠的濃度如何確定
1,看目的蛋白的大小一般actin以下的可以跑12膠紅線左右可以用12或10跑幾百的很大的用6的膠小蛋白12的10的一般都能跑如果不考慮效率的話...能跑多慢跑多慢,越慢跑的越好看2，看樣品濃度多少，以及你想用幾次通常我們是定到4微每微，總量100微，用10次如果濃度小的話定到2用5次
WB跑膠后沒有條帶是什么原因
提取細胞蛋白加1ml裂解液實在是有點多，你可以減少到200-300ul試試，提取蛋白后做個BCA蛋白定量，在做后續的考藍染色，確定蛋白沒有問題再電泳轉膜
泠凝器膠球自動在線清洗裝置介紹
在中央空調冷水機組管路上，加裝由發球器、收球器、控制器等管路系統組成的泠凝器膠球自動在線清洗裝置，通過發球器將膠球注入冷凝器內，在系統自有壓力的作用下，對冷凝器銅管內壁的污垢進行自動清洗，在出水口端由收球器將膠球濾回至發球器，形成一次完整的清洗循環。通過控制系統可設定清洗頻率，實現自動在線清洗功能，
血清分離膠促凝采血管的使用
?如何正確地使用分離膠促凝采血管制備高質量血清標本,血液完全凝固和離心條件是至關重要的兩個環節,離心要求采用水平式離心機。??? 具體操作步驟如下:????????采血后立即輕輕倒轉采血試管4~5次混勻標本,等待標本充分凝固需要放置30min,離心半徑200px,離心速度維持在3500~4000r/
WB電泳濃縮膠沒壓成一條線
第一、樣本本身含有高鹽。第二、積層膠長度不足，一般樣品1-2cm足矣。但是如果樣本含有高鹽可以考慮將積層膠加長到4cm左右。第三、緩沖液需要更換。使用多次的Buffer緩沖能力會大打折扣，如果樣品珍貴難得推薦用新鮮配制電泳緩沖液，反之用3次就丟棄吧！第四、上樣量有關。dxylark已經敘述。第五、電
WB轉膜時間與分子量及膠厚度的關系
分子量越大轉膜時間越長，60KD轉膜可以用300毫安恒流100min，20KD的話一個小時足夠了，膠越厚越不容易轉完全，不建議用1.5的膠。
血清分離膠促凝采血管離心操作的要求
? 如何正確地使用分離膠促凝采血管制備高質量血清標本,血液完全凝固和離心條件是至關重要的兩個環節,離心要求采用水平式離心機。具體操作步驟是:采血后立即輕輕倒轉采血試管4~5次混勻標本,等待標本充分凝固需要放置30min,離心半徑200px,離心速度維持在3500~4000r/min離心10min。血
天然果膠有幾類－各自在什么條件下膠凝
果膠物質是植物細胞壁成分之一，存在于相鄰細胞壁間的胞間層中，起著將細胞粘在一起的作用。不同的蔬菜，水果口感有區別，主要是由它們含有的果膠含量以及果膠分子的差異決定的。柑橘、檸檬、柚子等果皮中約含30%果膠，是果膠的最豐富來源。按果膠的組成可有同質多糖和雜多糖兩種類型：同質多糖型果膠如D-半乳聚糖、L
WB實驗中9％和11.5％的分離膠凝固時間是否不同
時間上應該會略有不同。擴展知識：WB，蛋白質印跡(Western blotting)又稱免疫印跡(immunoblotting)，是根據抗原抗體的特異性結合檢測復雜樣品中的某種蛋白的方法。該法是在凝膠電泳和固相免疫測定技術基礎上發展起來的一種新的免疫生化技術，具有SDS-PAGE的高分辨力和固相免疫
WB實驗中9％和11.5％的分離膠凝固時間是否不同
western-blot中分離膠濃度的選擇取決于目的蛋白分子量。 不同的分離膠濃度對不同的目的蛋白分子量的分辨率不一樣，比如15%的分離膠更適合45kDa的分目的蛋白，而10%的分離膠更適合70kDa的目的蛋白。 而因為western blot的膜應該是完全覆蓋SD
WB實驗中9％和11.5％的分離膠凝固時間是否不同
western-blot中分離膠濃度的選擇取決于目的蛋白分子量。 不同的分離膠濃度對不同的目的蛋白分子量的分辨率不一樣，比如15%的分離膠更適合45kDa的分目的蛋白，而10%的分離膠更適合70kDa的目的蛋白。
如何正確地使用分離膠促凝管使用方法
如何正確地使用分離膠促凝采血管制備高質量血清標本,血液完全凝固和離心條件是至關重要的兩個環節,離心要求采用水平式離心機。 具體操作步驟如下: 采血后立即輕輕倒轉采血試管4~5次混勻標本,等待標本充分凝固需要放置30min,離心半徑8cm,離心速度維持在3500~4000r/min離心10mi