植物葉綠體基因組基因表達調控的研究
葉綠體基因組的特點是具相同或相關功能的基因組成復合操縱子結構。這一特點有利于葉綠體基因的表達與調控，例如rpoB-rpoC-rpoC 2操縱子是由編碼RNA聚合酶各個亞基的基因聚合在一起而形成的，而psbI-psbK-psbD-psbC操縱子則編碼PSⅡ的部分蛋白質。葉綠體基因組基因表達調控方式。轉錄水平調節。轉錄后調節與修飾。萊茵衣藻核基因組與葉綠體基因組遺傳轉化體系的建立，以及許多光合途徑缺陷突變體的分離為研究轉錄后調節提供了一個非常有用的模式系統。遺傳分析表明RNA加工和RNA編輯為影響葉綠體基因表達轉錄后調節的因素。翻譯水平調節。翻譯水平調節可使生物快速地適應外界環境條件，特別對于高效表達基因，當環境條件不利時，可通過翻譯水平快速調節，從而減少代謝能源的消耗。RNA水平和細胞器代謝狀態影響葉綠體蛋白的翻譯, 這種調節可能是通過核糖體蛋白反式磷酸化來完成的。翻譯后調節與修飾。對于質體編碼的葉綠素。在每個葉原基細胞增殖過程中......閱讀全文
植物所揭示葉綠體蛋白轉運馬達新功能
葉綠體是植物進行光合作用的細胞器。正常發育過程受到核基因組和葉綠體基因組在多個層次的協同調控。核質互作的分子機理是葉綠體生物發生的核心科學問題之一。光合膜蛋白復合體的反應中心亞基通常由葉綠體基因編碼，而外周蛋白和天線蛋白由核基因組編碼。這些核基因組編碼的葉綠體蛋白，在細胞質中合成，而后通過葉綠體被膜
基因表達調控的概念
基因表達調控是生物體內基因表達的調節控制，使細胞中基因表達的過程在時間、空間上處于有序狀態，并對環境條件的變化作出反應的復雜過程。基因表達的調控可在多個層次上進行，包括基因水平、轉錄水平、轉錄后水平、翻譯水平和翻譯后水平的調控。基因表達調控是生物體內細胞分化、形態發生和個體發育的分子基礎。
我國學者揭示花葉組重樓植物葉綠體基因組特征
重樓屬植物主要生物活性物質為甾體皂苷，具有消炎、止血、抗腫瘤等功效，是云南白藥、宮血寧等86種著名中成藥的重要原料。重樓屬花葉組包括花葉重樓與祿勸花葉重樓兩種，與屬內其它植物相比，葉具斑塊，植株矮小，果實很小且產量低。花葉組重樓植物含有中國藥典規定的四種重樓皂苷。然而，花葉組重樓生長十分緩慢，對
關于藍藻和葉綠體基因組的比較研究介紹
原核的藍藻和真核植物（包括其他藻類）中的葉綠體，都同樣進行放氧的光合作用，這為人類和整個生物界提供了賴以生存的食物、氧氣、能源和原料。對葉綠體和藍藻的細胞結構和分子生物學特性作分析，證明真核生物的葉綠體可能起源于藍藻祖先的內共生。這使藍藻在20多年來已成為光合作用研究的模式生物。 藍藻基因組的
細胞化學基礎藍藻和葉綠體基因組的比較研究
原核的藍藻和真核植物（包括其他藻類）中的葉綠體，都同樣進行放氧的光合作用，這為人類和整個生物界提供了賴以生存的食物、氧氣、能源和原料。對葉綠體和藍藻的細胞結構和分子生物學特性作分析，證明真核生物的葉綠體可能起源于藍藻祖先的內共生。這使藍藻在20多年來已成為光合作用研究的模式生物。藍藻基因組的作圖和測
葉綠體基因組－－cpDNA的相關介紹
葉綠體基因組在很多方面與線粒體基因組的結構是相似的。葉綠體DNA（cpDNA）是雙鏈環狀，缺乏組蛋白和超螺旋。cpDNA中的GC含量與核DNA及mtDNA有 很大的不同。因此可用CsCl密度梯度離心來分離cpDNA。 每個葉綠體中cpDNA的拷貝數隨著物種的不同而不同。但都是多拷貝的。這些拷貝
基因組編輯調控植物內源基因翻譯效率的實驗流程
上游開放閱讀框uORF廣泛存在于動植物基因的5’非翻譯區，通常能夠抑制下游主開放閱讀框pORF的翻譯。中國科學院遺傳與發育生物學研究所高彩霞研究組率先利用CRISPR/Cas9技術對uORF進行編輯，發現能夠顯著提高目標基因的翻譯效率，建立了利用基因組編輯調控內源基因蛋白質翻譯效率的新方法，相關成果
武漢植物園在獼猴桃葉綠體基因組研究中獲得新進展
獼猴桃（Actinidia chinensis）是一種富含Vc的經濟水果，目前在全世界越來越受到消費者歡迎。盡管我國學者對中華獼猴桃的全基因組進行了測序，然而對獼猴桃葉綠體基因組并未進行組裝和注釋。 中國科學院武漢植物園獼猴桃資源與育種學科組副研究員姚小洪在研究員黃宏文的指導下，完成了不同倍性
植物激素調控基因研究獲進展
中科院上海藥物研究所徐華強與中科院遺傳與發育生物學研究所李家洋、美國溫安洛研究所Karsten Melcher等合作，在植物中發現了一個與人體中特定信號機制非常相似的重要的分子機制，該機制與人類早期胚胎發育和癌癥等疾病有著密切聯系。相關研究日前在線發表于《科學進展》。 植物中復雜的分子網絡調控
武漢植物園等在金豆的葉綠體全基因組解析研究中獲進展
金豆【Fortunella venosa（Champ. ex Benth.） C.C.Huang】是蕓香科中一種多年生常綠灌木。此物種為我國特有，分布區域與金柑【《中國植物志》 Fortunella hindsii （Champ. ex Hook.） Swingle】略有重疊，且范圍狹窄，主要分
基因表達調控主要表現
基因表達調控主要表現在以下幾個方面：①轉錄水平上的調控；②mRNA加工、成熟水平上的調控；③翻譯水平上的調控；
什么是基因表達調控
意義：1.適應環境、維持生長和增殖：生物體賴以生存的外環境是在不斷變化的，為了生存，所有活細胞都必須對外環境變化作出適當反應，調節代謝，以適應環境變化。生物體適應環境、調節代謝的能力與蛋白質分子的生物學功能有關。而蛋白質的水平又受基因表達的調控。2.維持個體發育與分化：多細胞生物調節基因的表達除為適
基因表達調控主要表現
基因表達調控主要表現在以下幾個方面:①轉錄水平上的調控;②mRNA加工、成熟水平上的調控;③翻譯水平上的調控;
什么是基因表達調控
分為轉錄水平上的基因表達調控和翻譯水平上的基因表達調控。1.轉錄水平的調控：包括DNA轉錄成RNA時的是否轉錄及轉錄頻率的調控，DNA的序列決定了DNA的空間構型，DNA的空間構型決定了轉錄因子是否可以順利的結合到DNA的調控序列上，比如結合到TATA等序列上。2.翻譯水平的調控：翻譯水平的調控又可
基因表達的調控模式介紹
轉錄調控可分為三種主要途徑:1)遺傳調控(轉錄因子與靶標基因的直接相互作用);2)調控轉錄因子與轉錄機制相互作用,3)表觀遺傳調控(影響轉錄的DNA結構的非序列變化)。通過轉錄因子直接調控靶標DNA表達是最簡單和最直接的轉錄調控改變轉錄水平的方法。基因的編碼區周圍通常都具有幾個蛋白質結合位點,具有調
基因表達調控的主要表現
基因表達調控主要表現在以下幾個方面：①轉錄水平上的調控；②mRNA加工、成熟水平上的調控；③翻譯水平上的調控；
研究揭示葉綠體分裂精細調控機制
北京林業大學生物科學與技術學院高宏波實驗室，首次對葉綠體分裂基因的表達調控機制進行了深入的研究，并提出了同一家族的轉錄因子可通過結構上的特異性分化來精細調控基因表達其家族進化的模型。相關成果日前在線發表于《植物雜志》。 據介紹，葉綠體分裂是近年來全球植物學研究領域的熱點，已有不少參與該過程
基因組編輯調控植物內源基因翻譯效率的實驗流程公布
上游開放閱讀框uORF廣泛存在于動植物基因的5’非翻譯區，通常能夠抑制下游主開放閱讀框pORF的翻譯。中國科學院遺傳與發育生物學研究所高彩霞研究組率先利用CRISPR/Cas9技術對uORF進行編輯，發現能夠顯著提高目標基因的翻譯效率，建立了利用基因組編輯調控內源基因蛋白質翻譯效率的新方法，相關
Nature：藻類基因組解讀葉綠體秘史
我們初學生物時接觸得最早的就是光合作用，光合作用利用二氧化碳、水和太陽能合成有機物。世界上最重要的光合作用真核生物(植物)多半并不是自己演化出光合作用能力的，它們的葉綠體是從其他生物中“拿來”的。 這些葉綠體來源于真核宿主吞食的光合細菌，這一過程被稱為初級內共生。隨后，紅藻和綠藻中的葉綠體
細胞化學基礎葉綠體基因組－－cpDNA
葉綠體基因組在很多方面與線粒體基因組的結構是相似的。葉綠體DNA（cpDNA）是雙鏈環狀，缺乏組蛋白和超螺旋。cpDNA中的GC含量與核DNA及mtDNA有 很大的不同。因此可用CsCl密度梯度離心來分離cpDNA。每個葉綠體中cpDNA的拷貝數隨著物種的不同而不同。但都是多拷貝的。這些拷貝位于類核
基因組編輯調控植物內源基因翻譯效率實驗流程發布
上游開放閱讀框uORF廣泛存在于動植物基因的5’非翻譯區，通常能夠抑制下游主開放閱讀框pORF的翻譯。中國科學院遺傳與發育生物學研究所高彩霞研究組率先利用CRISPR/Cas9技術對uORF進行編輯，發現能夠顯著提高目標基因的翻譯效率，建立了利用基因組編輯調控內源基因蛋白質翻譯效率的新方法，相關
葉綠體基因組－－cpDNA的結構功能特點
葉綠體基因組在很多方面與線粒體基因組的結構是相似的。葉綠體DNA（cpDNA）是雙鏈環狀，缺乏組蛋白和超螺旋。cpDNA中的GC含量與核DNA及mtDNA有 很大的不同。因此可用CsCl密度梯度離心來分離cpDNA。每個葉綠體中cpDNA的拷貝數隨著物種的不同而不同。但都是多拷貝的。這些拷貝位于類核
關于葉綠體基因組－－cpDNA的基本介紹
葉綠體基因組在很多方面與線粒體基因組的結構是相似的。葉綠體DNA（cpDNA）是雙鏈環狀，缺乏組蛋白和超螺旋。cpDNA中的GC含量與核DNA及mtDNA有 很大的不同。因此可用CsCl密度梯度離心來分離cpDNA。 每個葉綠體中cpDNA的拷貝數隨著物種的不同而不同。但都是多拷貝的。這些拷貝
武漢植物園在昆欄樹目葉綠體基因組研究方面取得新進展
真雙子葉植物基部類群昆欄樹目(Trochodendrales)僅包含兩個單種屬，水青樹屬(Tetracentron)和昆欄樹屬(Trochodendron)，是研究被子植物系統與進化的重要和關鍵類群之一。 與大多數被子植物相比，昆欄樹目植物葉綠體DNA的反向重復區(IRs)包含了更多的基因
科學家成功解析葉綠體基因轉錄蛋白質機器構造
葉綠體中的光合作用將光能轉化為化學能，吸收二氧化碳，釋放氧氣，是地球生物圈的重要塑造者。葉綠體約在15億年前通過藍藻內共生進化而來。在進化過程中，葉綠體基因要么被廢棄，要么逐漸轉移到細胞核染色體中，導致多數陸地植物葉綠體基因組只保留了110-130個基因。其中，大部分基因編碼基因轉錄、蛋白翻譯和光合
昆明植物所建立葉綠體基因組遺傳信息獲取技術體系
在分子生物學和基因組時代，葉綠體基因組為植物分類、系統發育和物種鑒定等提供了不可或缺的遺傳信息。隨著新一代測序技術的快速發展，葉綠體基因組學已經成為植物系統基因組學和超級條形碼研究的熱點，也是中國科學院昆明植物研究所三個重大突破目標——iFlora 研究的重要內容。 昆明植物所種質資源庫多年來
基因蛋白表達水平的雙向定量調控研究獲突破
原文地址：http://news.sciencenet.cn/htmlnews/2023/9/508171.shtm
基因表達的轉錄調控的介紹
可分為三種主要途徑： 1）遺傳調控（轉錄因子與靶標基因的直接相互作用）； 2）調控轉錄因子與轉錄機制相互作用； 3）表觀遺傳調控（影響轉錄的DNA結構的非序列變化）。 通過轉錄因子直接調控靶標DNA表達是最簡單和最直接的轉錄調控改變轉錄水平的方法。基因的編碼區周圍通常都具有幾個蛋白質結合
基因表達的翻譯調控的介紹
翻譯調控的效果不如轉錄調控或調控mRNA的穩定性,但也偶爾得到使用。抑制蛋白質翻譯是毒素和抗生素的主要作用目標,因此它們可以通過超越其正常的基因表達控制來殺死細胞。蛋白質合成抑制劑包括抗生素新霉素和毒素蓖麻毒素。
三域生物RNA聚合酶“最后一塊拼圖”被補上
原文地址：http://news.sciencenet.cn/htmlnews/2024/3/518213.shtm2016年1月，回國不滿半年的張余，在《中國科學院分子植物科學卓越創新中心人員遴選申請書》里寫到：“申請人擬開展的工作是運用結構生物學研究葉綠體編碼的RNA聚合酶（PEP）的工作機理和