原代細胞培養之——培養技術

原代細胞的培養也叫初代培養 是從供體取得組織細胞在體外進行的首次培養，是建立細胞系的第一步，是一項基本技術。原代細胞因剛從組織中分離開，生物學特性未發生很大變化，仍保留原來的遺傳特性，也最接近和反映體內生長特性，適宜用于藥物敏感性試驗、細胞分化等實驗研究。

原代細胞往往有多種細胞組成，比較混雜，即使從形態上為同一類型（上皮樣或成纖維樣），但細胞間仍有很大差異。如果供體不同，即使組織類型、部位相同，個體差異也照樣存在，原代細胞生物特性尚不穩定，如需做較為嚴格的對比性實驗研究，還需進行短期傳代培養。

1、組織塊培養法

組織塊培養是常用、簡便易行和成功率較高的原代培養方法，也是早期采用培養細胞的方法，故原先被稱為組織培養。其方法：為將剪成的小組織團塊接種于培養瓶（或皿）中，瓶壁可預先涂以膠原薄層，以利于組織塊粘著于瓶壁，使周邊細胞能沿瓶壁向外生長，方法簡便，利于培養，部分種類的組織細胞在小塊貼壁24小時后細胞就從組織塊四周游出，然后逐漸延伸，長成肉眼可以觀察到的生長暈，5~7天后組織塊中央的組織細胞逐漸壞死脫落和發生漂浮，此漂浮小塊可隨換液而棄去，由組織塊周圍延伸的貼壁細胞也逐漸形成層片，可在顯微鏡下觀察形態和用于實驗研究。其培養方法如下：

(1)按照前述方法取材，將組織剪成或切成1mm3大小的小塊，并加入少許培養基使組織濕潤。

(2)將小塊均勻涂布于瓶壁，每小塊間距0.2 cm~0.5cm，一般在25mL培養瓶(底面積為17.5cm2)可接種20～30小塊為宜,小塊放置后,輕輕翻轉培養瓶,使瓶底朝上,然后于瓶內加入適量培養基蓋好瓶塞,將瓶傾斜放置在37℃溫箱內。

(3)培養2~4小時，待小塊貼附后，將培養瓶緩慢翻轉平放，靜置培養，動作要輕，嚴禁搖動和來回振蕩，以防由于沖動而使小塊漂起而造成培養失敗，若組織塊不易貼壁可預先在瓶壁涂一薄層血清、胎汁或鼠尾膠原等。開始培養時培養基不宜多，以保持組織塊濕潤即可，培養24小時后再補液，培養初期移動和觀察時要輕拿輕放，開始幾天盡量不去搬動，以利貼壁和生長，培養3~5天時可換液，一方面補充營養，一方面去除代謝產物和漂浮小塊所產生的毒性作用。 

原代細胞培養－2

2.消化培養法

該方法是采用前述的消化分散法，將妨礙細胞生長的細胞間質（包括基質、纖維等）去除，使細胞分散形成細胞懸液，然后分瓶培養。

某些特殊類型細胞，如內皮細胞、骨細胞等的消化手段和步驟，將在有關章節中敘述。

3.懸浮細胞培養法

對于懸浮生長的細胞，如白血病細胞、淋巴細胞、骨髓細胞、胸水和腹水中的癌細胞和免疫細胞無需消化，可采用低速離心分離，直接培養，或經淋巴細胞分層液分離后接種培養。

4.器官培養

器官培養是指從供體取得器官或組織塊后，不進行組織分離而直接在體外的特定環境條件下培養，其特性仍保持原有器官細胞的組織結構和聯系、并能存活，器官培養的目的和技術均與單層細胞培養不同，但可利用器官培養對器官組織的生長變化進行體外觀察。并觀察不同培養條件研究對器官組織的影響。器官培養可保持器官組織的相對完整性，可用于重點觀察細胞間的聯系、排列情況和相互影響，以及局部環境的生物調節作用。體外器官培養為臨床上的器官移植創造了便利的條件。器官培養的條件與細胞培養不同，要有特殊的要求。

1.  器官培養的特殊的要求

(1)需要特殊的培養條件 因器官離體培養，其營養和氧氣僅靠自然滲透來供給，因此，培養時為了確保中心不發生缺乏氧和營養而造成壞死，其厚度或直徑不宜超過1mm。

(2)器官內部細胞需要有足夠的氧氣滲入 常采用以下兩種方法：

① 將器官組織塊置于培養基氣液面以利于氣體交換。

提高培養基中的氧分壓，一般需加注純氧，提高氧分壓時仍需保持5% CO2，以維持pH。

2. 器官培養的方法

(1)將不銹鋼網做成的支架，放置于培養皿中，高度為1/2皿高，使其表面鋪上0.5mm孔徑的濾膜。

(2)將培養基加入平皿中，使培養液剛剛接觸到濾膜，但不要使濾膜浮起。

(3)將要培養的器官組織平放在濾膜上，一般厚度不要超過200μm，水平面積不超過10mm2，如為肝、腎不能大于1mm2。

(4)將培養物置于CO2培養箱內，并加注氧氣，調整氧分壓達90%，培養時注意使液面與膜保持在一致的水平上。

(5)上述器官培養1~3周（每隔2~3天換液一次）后可用于實驗和檢測。