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  • 發布時間:2019-09-12 10:15 原文鏈接: 大量培養物中分離BACDNA

               

    實驗方法原理 BAC 重組子的精細分析,包括詳細的限制酶切圖譜、DNA 測序或亞克隆,所需 DNA 量都超過小量制備所能提供的量。本方案的制備流程適用于重組 BAC 的大規模培養物。500 ml BAC 轉化菌的平均產量為 20~25 μg BAC DNA。還可用柱層析對 DNA 產物進一步純化。
    實驗材料

    溶菌酶 限制性內切核酸酶 DNA 標準參照物 層析樹脂 大腸桿菌

    試劑、試劑盒

    乙醇 異丙醇 DNA提取液 堿性裂解液 STE溶液 TE

    儀器、耗材

    脈沖場凝膠電泳儀 LB 培養基 Sorvall GSA 轉頭或同類產品

    實驗步驟

    一、材料

    1. 緩沖液和溶液

    乙醇

    異丙醇

    酚: 氯仿(1:1, V/V)

    DNA 提取液

    堿性裂解液Ⅰ,預冷

    堿性裂解液Ⅱ

    堿性裂解液Ⅲ,預冷

    STE 溶液,預冷

    TE ( pH 8.0)

    2. 酶和緩沖液

    溶菌酶

    限制性內切核酸酶

    3. 核苷酸與寡核苷酸

    脈沖場凝膠電泳的 DNA 標準參照物

    4. 凝膠

    脈沖場凝膠電泳儀

    5. 培養基

    含 12.5 μg/ml 氯霉素的 LB 培養基

    6. 離心機與轉頭

    Sorvall GSA 轉頭或同類產品,備有 Oakridge 管(Nalgene)

    7. 專用設備

    層析樹脂

    8. 載體和菌株

    BAC 轉化的大腸桿菌

    二、方法

    1. 將 50 μl 過夜培養的飽和 BAC 轉化菌接種到 500 ml 含 12.5 μg/ml 氯霉素的 LB 培養基中,37℃ 劇烈振蕩(300 r/min) 培養 12~16 h 至細胞達到飽和。

    2. 4℃ 下,2500 g(Sorvall GSA 轉頭 3900 r/min)離心 15 min,收集細胞,棄上清,倒置離心瓶使最后一滴上清流盡。

    3. 用 100 ml 冰預冷的 STE 重新懸浮細菌沉淀。按步驟 2 方法離心收集細菌。

    4. 用 24 ml 含無 DNase 的 RNA 酶(100 μg/ml ) 的堿性裂解液Ⅰ溶解細菌。加溶菌酶至終濃度為 1 mg/ml。

    5. 加入 24 ml 新鮮配制的堿性裂解液Ⅱ。蓋緊離心瓶蓋,輕輕翻轉瓶子數次,使內容物完全混勻,冰浴 5 min。

    6. 加入 24 ml 冰預冷的堿性裂解液Ⅲ,蓋緊離心瓶蓋,輕輕渦旋離心瓶使內容物完全混勻,至無明顯的兩相分層現象,置冰上 5 min。

    7. 4℃ 下,15000 g(Sorvall GSA 轉頭 9600 r/min)離心細菌裂解液 10 min,然后將上清轉移至另一聚丙烯離心瓶中。棄去離心瓶中的沉淀。

    8. 加等體積的酚:氯仿。輕輕翻轉離心瓶數次,混勻水相和有機相。室溫下 3000 g ( Sorvall GSA 轉頭 4300 r/min ) 離心 15 min,使兩相分離。

    9. 用一寬口徑吸頭將水相移至一新離心瓶中,加入等體積的異丙醇,翻轉離心瓶數次,混勻。

    10. 在離心瓶的一側做標記,并且將有標記的一側放在遠離轉頭中心的一面。此標記有助于接下來確定核酸沉淀的位置。室溫下 15000 g ( Sorvall GSA 轉頭 9600 r/min) 離心 15 min, 回收核酸沉淀。

    11. 小心棄去上清,將離心瓶倒立在一紙中上,至最后一滴上清流盡。室溫下用 20 ml 70% 乙醇漂洗沉淀和管壁。吸干乙醇,室溫下將瓶倒立在一疊紙巾上幾分鐘,使乙醇揮發殆盡。

    12. 小心地將 BAC DNA 沉淀溶于 0.2 ml TE ( pH 8.0) 中。輕彈管壁而不要在渦旋儀上振蕩,以促進 DNA 溶解。通過光譜吸收測 DNA 濃度。

    13. 用限制性內切核酸酶消化 DNA。

    14. 用 PFGE 分析消化的 BAC DNA。電泳要采用適宜大小的 DNA 標準參照物。

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