小編在后臺收到不少關于建樹的問題,今天轉載一篇PLoB的帖子,分享給大家,一起來看一下吧~
方法的選擇
首先是方法的選擇。
基于距離的方法有UPGMA、ME(Minimum Evolution,最小進化法)和NJ(Neighbor-Joining,鄰接法)等。其他的幾種方法包括MP(Maximum parsimony,最大簡約法)、ML(Maximum likelihood,最大似然法)以及貝葉斯(Bayesian)推斷等方法。其中UPGMA法已經較少使用。
一般來講,如果模型合適,ML的效果較好。對近緣序列,有人喜歡MP,因為用的假設最少。MP一般不用在遠緣序列上,這時一般用NJ或ML。對相似度很低的序列,NJ往往出現Long-branch attraction(LBA,長枝吸引現象),有時嚴重干擾進化樹的構建。貝葉斯的方法則太慢。對于各種方法構建分子進化樹的準確性,一篇綜述(Hall BG. Mol Biol Evol 2005, 22(3):792-802)認為貝葉斯的方法最好,其次是ML,然后是MP。其實如果序列的相似性較高,各種方法都會得到不錯的結果,模型間的差別也不大。
對于NJ和ML,是需要選擇模型的。對于各種模型之間的理論上的區別,這里不作深入的探討,可以參看Nei的書。對于蛋白質序列以及DNA序列,兩者模型的選擇是不同的。以作者的經驗來說,對于蛋白質的序列,一般選擇Poisson Correction(泊松修正)這一模型。而對于核酸序列,一般選擇Kimura 2-parameter(Kimura-2參數)模型。如果對各種模型的理解并不深入,作者并不推薦初學者使用其他復雜的模型。
Bootstrap幾乎是一個必須的選項。一般Bootstrap的值>70,則認為構建的進化樹較為可靠。如果Bootstrap的值太低,則有可能進化樹的拓撲結構有錯誤,進化樹是不可靠的。
對于進化樹的構建,如果對理論的了解并不深入,作者推薦使用缺省的參數。需要選擇模型的時候(例如用NJ或者ML建樹),對于蛋白序列使用Poisson Correction模型,對于核酸序列使用Kimura-2參數模型。另外需要做Bootstrap檢驗,當Bootstrap值過低時,所構建的進化樹其拓撲結構可能存在問題。并且,一般推薦用兩種不同的方法構建進化樹,如果所得到的進化樹類似,則結果較為可靠。
軟件的選擇

表1 一些與構建分子進化樹相關的軟件
構建NJ樹,可以用PHYLIP(寫得有點問題,例如比較慢,并且Bootstrap檢驗不方便)或者MEGA。MEGA是Nei開發的方法并設計的圖形化的軟件,使用非常方便。作者推薦MEGA軟件為初學者的首選。雖然多雪列比對工具ClustalW/X自帶了一個NJ的建樹程序,但是該程序只有p-distance模型,而且構建的樹不夠準確,一般不用來構建進化樹。
構建MP樹,最好的工具是PAUP,但該程序屬于商業軟件,并不對學術免費。因此,作者并不建議使用PAUP。而MEGA和PHYLIP也可以用來構建進化樹。這里,作者推薦使用MEGA來構建MP樹。理由是,MEGA是圖形化的軟件,使用方便,而PHYLIP則是命令行格式的軟件,使用較為繁瑣。對于近緣序列的進化樹構建,MP方法幾乎是最好的。
構建ML樹可以使用PHYML,速度最快。或者使用Tree-puzzle,速度也較快,并且該程序做蛋白質序列的進化樹效果比較好。而PAML則并不適合構建進化樹。
ML的模型選擇是看構出的樹的likelihood值,從參數少,簡單的模型試起,到likelihood值最大為止。ML也可以使用PAUP或者PHYLIP來構建。這里作者推薦的工具是BioEdit。BioEdit集成了一些PHYLIP的程序,用來構建進化樹。Tree-puzzle是另外一個不錯的選擇,不過該程序是命令行格式的,需要學習DOS命令。PHYML的不足之處是沒有win32的版本,只有適用于64位的版本,因此不推薦使用。值得注意的是,構建ML樹,不需要事先的多序列比對,而直接使用FASTA格式的序列即可。
貝葉斯的算法以MrBayes為代表,不過速度較慢。一般的進化樹分析中較少應用。由于該方法需要很多背景的知識,這里不作介紹。
需要注意的幾個問題是:
其一,如果對核酸序列進行分析,并且是CDS編碼區的核酸序列,一般需要將核酸序列分別先翻譯成氨基酸序列,進行比對,然后再對應到核酸序列上。這一流程可以通過MEGA 3.0以后的版本實現。MEGA3現在允許兩條核苷酸,先翻成蛋白序列比對之后再倒回去,做后續計算。
其二,無論是核酸序列還是蛋白序列,一般應當先做成FASTA格式。FASTA格式的序列,第一行由符號“>”開頭,后面跟著序列的名稱,可以自定義,例如user1,protein1等等。將所有的FASTA格式的序列存放在同一個文件中。文件的編輯可用Windows自帶的記事本工具,或者EditPlus(google搜索可得)來操作。
文件格式如圖1所示:

圖1 FASTA格式的序列
另外,構建NJ或者MP樹需要先將序列做多序列比對的處理。作者推薦使用ClustalX進行多序列比對的分析。多序列比對的結果有時需要后續處理并應用于文章中,這里作者推薦使用GeneDoc工具。而構建ML樹則不需要預先的多序列比對。
因此,作者推薦的軟件組合為:MEGA 3.1 + ClustalX + GeneDoc + BioEdit。
數據分析及結果推斷
一般碰到的幾類問題是:
推斷基因/蛋白的功能;
基因/蛋白家族分類;
計算基因分化的年代。
關于這方面的文獻非常多,這里作者僅做簡要的介紹。
推斷基因/蛋白的功能,一般先用BLAST工具搜索同一物種中與不同物種的同源序列,這包括直向同源物(ortholog)和旁系同源物(paralog)。如何界定這兩種同源物,網上有很多詳細的介紹,這里不作討論。然后得到這些同源物的序列,做成FASTA格式的文件。一般通過NJ構建進化樹,并且進行Bootstrap分析所得到的結果已足夠。如果序列近緣,可以再使用MP構建進化樹,進行比較。如果序列較遠源,則可以做ML樹比較。使用兩種方法得到的樹,如果差別不大,并且Bootstrap總體較高,則得到的進化樹較為可靠。
基因/蛋白家族分類。這方面可以細分為兩個問題。一是對一個大的家族進行分類,另一個就是將特定的一個或多個基因/蛋白定位到已知的大的家族上,看看屬于哪個亞家族。例如,對驅動蛋白(kinesin)超家族進行分類,屬于第一個問題。而假如得到一個新的驅動蛋白的序列,想分析該序列究竟屬于驅動蛋白超家族的14個亞家族中的哪一個,則屬于后一個問題。這里,一般不推薦使用MP的方法。大多數的基因/蛋白家族起源較早,序列分化程度較大,相互之間較為遠源。這里一般使用NJ、ME或者ML的方法。
計算基因分化的年代。這個一般需要知道物種的核苷酸替代率。常見物種的核苷酸替代率需要查找相關的文獻。這里不作過多的介紹。一般對于這樣的問題,序列多數是近緣的,選擇NJ或者MP即可。
如果使用MEGA進行分析,選項中有一項是“Gaps/Missing Data”,一般選擇“Pairwise Deletion”。其他多數的選項保持缺省的參數。
總結
在實用中,只要方法、模型合理,建出的樹都有意義,可以任意選擇自己認為好一個。最重要的問題是:你需要解決什么樣的問題?如果分析的結果能夠解決你現有的問題,那么,這樣的分析足夠了。因此,在做進化分析前,可能需要很好的考慮一下自己的問題所在,這樣所作的分析才有針對性。
序列比對建議用ClustalX。
建NJ或MP樹,用MEGA就可以了,非常方便。
若要建ML樹推薦用phyML。
建Bayes樹推薦用Parallel MrBayes。
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