摘要:
Vogelstein和Kinzler(美國國家科學院院刊,1999年)第一次描述了Digital PCR(dPCR)的概念,一種在微量細胞群中(如原發性腫瘤組織)鑒定突變的方法。通過稀釋樣品DNA到一個單個分子水平,它可以把PCR自然模擬指數轉化為數字信號。當PCR成功的擴增出這些單個分子,產物可以通過對觀察到的預期的體細胞純合突變峰進行測序分析,而不是典型測序反應中的被遮蓋在背景雜峰中的少量低峰。通過擴增足夠多的單個分子的擴增產物, 基于觀察到的突變體與全部的成功擴增產物的比,微量突變體可以被鑒定出。
方法:
我們采用一種加入HRM使用的改良dPCR方法,通過特殊的HRM曲線圖在原發性腫瘤樣本中發現低含量的突變部分。
數字PCR要求以單個DNA分子作為擴增模板,從而使末端檢測變為數字讀出而不是模擬的DNA混合物。為了應用HRM,需要獲得更多的擴增產物,來得到更加可靠的HRM曲線圖組,因此我們選擇了五不同的稀釋濃度。
這些稀釋樣本是基于后續的靈敏度接近于20%的測序手段去檢測微量突變體. HRM表現出高敏感性,下至2-5%的突變體都可被檢出。因此,一個單一突變基因的復制足以在溶解曲線圖中發現他們的差異.
檢測14種不同癌癥基因,17個樣本表現出存在可能的微量突變體(12)或已知突變(5)。(見表1)

對于已知突變的樣本,建立了含有5%,2.5%和1.25%的微量等位基因的混合物。所有的樣本都進行了目標濃度為5,10,20和40份拷貝的稀釋,擴增循環數24。
在高分辨率熔解曲線分析中排除沒有理想擴增產物的樣品。挑選出顯示可能有突變的稀釋樣品進行測序。圖1 說明了這種dPCR方法中應用HRM的工作流程。

結果:
12個腫瘤樣本中的9個被確定存在微量突變體。而所有的5個已知突變的樣本全部成功的在1.25%稀釋濃度下被鑒定出來。圖2說明了“有效”的濃度可以通過應用表2的概率估計。
在5份拷貝這個稀釋度中存在6個擴增失敗,建議有效地稀釋濃度接近1-1.5倍(3-4.5pg)。

圖3和圖4是一個例子,來演示如何在同一個樣本上運用多重稀釋,以確定理想的稀釋濃度來鑒定微量突變體


圖5a和5b顯示已知的BRAFx15突變分別稀釋在20和40的拷貝數。等位基因分數反映,測序方法與稀釋度很好的對應起來。

結論:
這些結果顯示了與傳統dPCR相比,如何利用HRM預檢改良dPCR方法,顯著的降低后續測序階段的工作來發現微量突變體。
在這項研究中,鑒定候選的HRM曲線比傳統的所有模板重測序的方法減少了90%的工作量。
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