大規模純化
| 實驗方法原理 |
對于很多研究,部分純化的病毒就足夠了(進行到本實驗步驟 14), 如果是純化 MVA 病毒,則不能用胰酶消化,也不能用 CEF 細胞或 BHK-21 細胞代替 HeLa 細胞。 |
|---|---|
| 實驗材料 | 痘苗病毒儲液 HeLa S3 細胞(懸浮培養) |
| 試劑、試劑盒 | 胰酶 Tris ? Cl 蔗糖 |
| 儀器、耗材 | 旋轉搖瓶完全培養基-5 帶緊杵的 2 L 通氣旋轉搖瓶 杜恩斯勻漿器(帶緊杵) 杯狀超聲儀Beckman 超速離心機 無菌離心管(SW27 或 SW28 轉頭) 分光光度計 |
| 實驗步驟 |
1. 使用前將等體積的疸苗病毒儲液和 0.25 mg/ml 的胰酶混合,用力振蕩。37℃ 水浴溫育 30 min,在溫育過程中每隔 5~10 min 渦旋振蕩一次。 2. 用血球計數器對 HeLa S3 細胞計數(附錄 3F)。 3. 將 5 × 108 的 HeLa S3 細胞轉移至離心管中,室溫 1800 g 離心 10 min,棄上清。 4. 然后按 2 × 107 細胞/ml 的濃度用旋轉搖瓶完全培養基-5 重懸細胞。 5. 按 5~8 pfu/細胞(MOI)將消化過的病毒加到細胞懸液中,攪拌溫育 30 min。 6. 將細胞轉移至裝有 1 L 旋轉搖瓶完全培養基-5 的通氣旋轉搖瓶中,攪拌培養 2~3 天。 7. 5~10℃,1800 g 離心 5 min,棄上清。 8. 將細胞懸浮于 14 ml 的 10 mmol/L pH 9.0 的 Tris ? Cl 溶液中。以下步驟中樣品均需置于冰上。 9. 用杜恩斯勻漿器經過 30~40 次的擊打將細胞懸液均質化,通過顯微鏡檢査細胞的破碎情況。 10. 5~10℃,300 g(H-6000A 轉子中為 900 r/min)離心 5 min 以去除核,保留上清。 11. 將細胞沉淀懸浮于 3 ml 的 10 mmol/L pH 9.0 的 Tris ? Cl 溶液。5~10℃,300 g 離心 5 min,保留上清,并與步驟 10 中的上清合并。 12. 對上清(溶解產物)進行超聲處理,整個過程都應保持溶解產物低溫,按照下面的步驟用杯狀的超聲儀進行超聲。 12.1 將樣品按每份 3 ml 進行分裝,分別超聲處理。 12.2 將杯中裝滿冰水混合物(50% 的冰),將裝有溶解產物的管子置于冰水混合物 中,用最大功率超聲 1 min。 12.3 重復超聲 3 或 4 次,每次超聲后將溶解產物置于冰上 ≥ 30 s。 13. 將溶解產物加到盛有 17 ml 36% 蔗糖墊層的無菌 SW27(或 SW28)離心管中。 4℃,32900 g 離心 80 min。將上清吸出丟棄。 14. 將病毒沉淀懸浮于 1 ml 的 1 mmol/L pH 9.0 的 Tris ? Cl 溶液中。到這一步純化出的病毒對于某些用途,比如分離 DNA,其純度已經足夠了。 15. 按照步驟 12 的方法超聲 1 min。 16. 在使用的前一天制備無菌的 24%~40% 的持續蔗糖梯度,分別小心地將 6.8 ml 的 40%、36%、32%、28% 和 24% 的蔗糖溶液加到無菌的 SW27 離心管中。在冰箱中靜置過夜。 17. 將 1 ml 超聲過的病毒沉淀(來自步驟 15)加到蔗糖梯度的上層。4℃,26000 g 離心 50 min。 18. 可見乳白色的病毒帶出現在離心管的中部。將病毒帶以上的蔗糖溶液吸棄,小心地用無菌槍頭將病毒帶(約 10 ml)收集于一個無菌管中保存。 19. 將剩余的蔗糖溶液吸出后收集聚集于蔗糖梯度底部的病毒聚合物。上下抽吸將病毒沉淀重懸于 1 ml 的 1 mmol/L pH 9.0 的 Tris ?Cl 溶液中。 20. 按照步驟 12 的方法超聲 1 min。 21. 重復步驟 16~18 的操作,收集病毒帶,與步驟 18 所收集的病毒溶液合并。加入兩 倍體積的 1 mmol/L pH 9.0 的 Tris ? Cl 溶液混合,轉移至無菌的 SW27 離心管中。溶液總體積應有 60 ml,足夠裝滿兩個 SW 27 離心管。如果得到的體積較少,用 1 mol/L pH 9.0 的 Tris ? Cl 溶液補滿離心管。 22. 4℃,32900 g 離心 60 min,吸棄上清。 23. 將病毒沉淀重懸于 1 ml 的 1 mmol/L pH 9.0 的 Tris ? Cl 溶液中,按照步驟 12 的方法超聲,然后按每份 200~250 μl 進行分裝。留一份進行步驟 24 操作,其余的凍存于 -70℃。 24. 用分光光度計在 260 nm 處對未凍存的病毒樣品進行定量,以此確定提取痘苗病毒 DNA 時所需要的病毒量(見輔助方案 2)。 25. 將病毒懸液在冰上超聲 20~30 s(見步驟 12),然后進行 10 倍系列稀釋,直至 10-10。用 10-8、10-9 和 10-10 這 3 個稀釋度去感染 6 孔板中培養的單層生長至匯片 的 BS-C-1 細胞,每個稀釋度做雙份。
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| 注意事項 |
1. 病毒儲液的滴度通常為 2 × 109 pfu/ml,但不同來源的病毒儲液的滴度也許會遠低于這個滴度。 如果有可見的結團存在,冷卻到 0℃,并在冰上超聲 30 s。超聲可重復數次,但兩次超聲之間樣本應置冰上冷卻。 2. 步驟 12.3 中,因為超聲過程會使冰融化,所以應向杯中重新加入冰。 3. 一個光密度單位是 1.2 × 1010 個病毒顆粒,即是(2.5~5)× 108 pfu。由于光的散射、不吸光,在不同的分光光度計上這個值也許會有輕微的不同。
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