用溴脫氧尿苷(BrdU)取代的探針進行紫外交聯
| 實驗方法原理 |
含有胸苷鹵代物如溴脫氧尿苷(BrdU)的DNA比非取代的DNA對紫外線誘導的 交聯更為敏感。本方案中的紫外交聯效率是0.1%?10%,而且在單一復合物中出現1 次以上交聯事件的情況十分罕見。 |
|---|---|
| 實驗材料 | 含有所研究結合位點的M13單鏈載體 |
| 試劑、試劑盒 | 17 bp 的 M13 通用引物 1×和10×限制性內切核酸酶緩沖液 (分別含500μmol L和500 mmol L NaCl) 3000 Ci mmol [α32P] dCTP 50×dNTP BrdU 溶液 0.lmol L 二硫蘇糖醇(DTT) |
| 儀器、耗材 | DEAE 膜(Schleicher &- Schuell NA45) 0.5 mL圓底 螺旋蓋的小瓶(Nunc或相當產品) 水浴鍋 紫外透射儀 |
| 實驗步驟 |
1)將10μL含有高親和性蛋白結合位點的目的序列的單鏈M13載體與等摩爾的17 bp M13通用引物混合。用1×限制性內切核酸酶緩沖液(50 mmol/L NaCl)將終體積調至100μL。90℃加熱5min,在室溫下冷卻過夜。 2) 將下列反應物加入雜交混合物中: 50μL [α32P] dCTP (3000 Ci/mmol) 3.5μL 50× dNTP/BrdU 溶液 1.75μL 0.1 mol/L 二硫蘇糖醇(DTT) 7.5μL 10×限制性內切核酸酶緩沖液(NaCl終濃度50 mmol/L) 7μL H2O 5μL Klenow 酶(25 U) 16℃溫育 90 min。 3) 68℃加熱 10 min 滅活 Klenow 酶。 4) 在合適條件下,用40U限制性內切核酸酶消化,產生20?600 bp的DNA片段。 5) 加乙酸銨至0.3 mol/L,用2倍體積的100%乙醇沉淀DNA,重懸于TE緩沖液中。 6) 在含有0.5μg/mL溴化乙錠的瓊脂糖凝膠上電泳。用DEAE膜分離所要的DNA片段。 7) 用閃爍計數器檢測BrdU取代的DNA片段的特異活性,并用溴化乙錠點跡定量法估計DNA的濃度。 探針的完整性和功能可用遷移率變動DNA結合分析法進行檢測。 8) 在1.5 mL圓底小瓶中建立下列結合反應: 105cpm均衡標記的探針、經緩沖的含有結合蛋白的提取液、10~20μg DNA 載體如 poly (dl-dC) ? poly (dl-dC)。總體積調至50μL。用塑料薄膜封口,再加封Parafilm膜固定。 9) 將小瓶置于試管架上,用倒置的紫外透射燈(305nm,7000μW/cm2) 在正上方5 cm處照射60 min 10) 在各結合反應管中加入以下反應物: 1μL 0.5 mol/L CaCl2 4μg DNA 酶 I 1U微球菌核酸酶 37℃消化 30 min。 11) 加入等體積的2×SDS樣品緩沖液到反應混合物中,100℃煮沸5min。 12) 在適當濃度的不連續SDS-聚丙烯酰胺凝膠上對樣品進行電泳,包括14C 標記的蛋白質分子質量標記物。 13) 電泳結束后,切去凝膠前沿的染料。 14) 干膠,并且用增感屏放射自顯影1?3天,以觀測交聯的蛋白質。
展開 |
| 注意事項 | |
| 其他 |
其他所需試劑:25 U大腸桿菌DNA聚合酶I的Klenow片段,乙酸銨,100%乙醇,TE緩沖液,經緩沖的含有DNA結合蛋白的提取液,大分子載體 DNA,如 poly (dl-dC) ? poly (dl-dC),0.5 mol/L CaCl2,DNA 酶 I (Worthington),1 U微球菌核酸酶(Worthington),2×SDS樣品緩沖液,Fluor (Du Pont NEN Enhance 或相當物),14C標記的蛋白質分子質量標記物 |
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