動物實驗基本操作技術之一“實驗動物抓取與固定”
（一）小鼠用右手提起小鼠尾部，放在實驗臺上，當其向前爬行時，左手抓住兩耳及頭頸部皮膚，再置小鼠于左手心，拉直四肢并用手指夾住肢體固定。右手可行注射或其它操作。小鼠固定器及固定器固定法（二）大鼠右手輕輕抓住大鼠尾部向后輕拉，左手抓緊鼠兩耳及頭頸部皮膚，并將其固定在左手中，右手可行注射或其它操作。大鼠固定器及固定器固定法（三）兔1、 正確的抓取兔的方法如下：說明：1、可傷兩腎；2、可造成皮下出血；3、可傷兩耳；4、頸部皮膚厚可抓；5、用手拖住身體。4和5為正確的方法。2、固定兔的方法依實驗需要而定。分兔臺固定、馬蹄鐵固定和立體定位儀固定等。①兔臺固定，將兔仰臥，四肢用粗線繩一端縛扎于前后肢的踝關節以上部位，兩前肢線繩在背后交叉穿過，分別固定在兔臺兩側；兩后肢左右分開，固定在兔臺尾端。兔頭可用特制的兔頭夾固定。家兔固定臺固定方法②進行頭顱部實驗時，常用馬蹄鐵或立體定位儀進行固定。先剪去兩側眼眶下部的一小塊皮毛，將馬蹄鐵兩側......閱讀全文
動物實驗基本操作技術之一“實驗動物抓取與固定”
（一）小鼠用右手提起小鼠尾部，放在實驗臺上，當其向前爬行時，左手抓住兩耳及頭頸部皮膚，再置小鼠于左手心，拉直四肢并用手指夾住肢體固定。右手可行注射或其它操作。小鼠固定器及固定器固定法（二）大鼠右手輕輕抓住大鼠尾部向后輕拉，左手抓緊鼠兩耳及頭頸部皮膚，并將其固定在左手中，右手可行注射或其它操作。大鼠固
實驗動物的抓取固定方法
正確的抓取固定動物，是為了不損害動物健康，不影響觀察指標，并防止被動物咬傷，保證實驗順利進行。抓取固定動物的方法依實驗內容和動物類而定。抓取固定動物前，必須對各種動物的一般習性有所了解，抓取固定時既要小心仔細，不能粗暴，又要大膽敏捷，確實達到正確抓取固定動物的目的。（一）小鼠抓取固定方法小鼠溫順，一
實驗動物的編號、抓取和固定方法
1、實驗動物的編號實驗時，為了分組和辨別的方便，常需事先為實驗動物進行編號。常用的編號方法如下：1）染料標記法：常用染料——紅色染料：5％中性紅或品紅液；黃色染料：3%～5％苦味酸溶液；咖啡色染料：2％硝酸銀溶液；黑色染料：煤焦油的乙醇溶液。標記規則——根據實驗動物被毛顏色的不同選擇不同化學藥品涂染
動物實驗的基本操作技術
動物實驗的基本操作技術實驗動物(experimental animals)是指經過人工飼養、繁育，對其攜帶的微生物及寄生蟲實行控制，遺傳背景明確或者來源清楚，應用于科研、教學、生產和檢定以及其他科學實驗的動物。這些個體具有較好的遺傳均一性、對外來刺激的敏感性和實驗再現性。?一、常用實驗動物的種類
大鼠抓取與固定實驗
大白鼠牙齒鋒利，捕捉時要提防被咬傷。從籠內抓取周齡較小的大白鼠時，需抓住大白鼠尾巴的根部，不要讓大白鼠懸在空中的時間過長，否則易激怒大白鼠并易致尾部皮膚脫落，抓取大的時，用左手從背部中央到胸部捏住，但用力不宜過大，最好戴防護手套，但手套不宜過厚。如若是灌胃、腹腔注射、肌肉或皮下注射，可采用抓取小鼠的
大鼠抓取與固定實驗
實驗材料大白鼠實驗步驟大白鼠牙齒鋒利，捕捉時要提防被咬傷。從籠內抓取周齡較小的大白鼠時，需抓住大白鼠尾巴的根部，不要讓大白鼠懸在空中的時間過長，否則易激怒大白鼠并易致尾部皮膚脫落，抓取大的時，用左手從背部中央到胸部捏住，但用力不宜過大，最好戴防護手套，但手套不宜過厚（如圖1）圖1如若是灌胃、腹腔注射
實驗動物抓取保定方法
一、小鼠的抓取保定小鼠性情較溫順，掙扎力小，比較容易抓取和保定。抓取時，用左手拇指和食指捏住小鼠尾巴中部（如圖11-3所示）放在格板或鐵籠上。趁著小鼠試圖掙脫的瞬間，迅速用另外三個手指壓住小鼠的尾巴根部握入手掌（如圖11-4所示）；放松拇指和食指，用另外三個手指控制小鼠，然后用食指和拇指捏住小鼠頭部
動物實驗的基本操作技術1
實驗動物實驗動物(experimental animals)是指經過人工飼養、繁育，對其攜帶的微生物及寄生蟲實行控制，遺傳背景明確或者來源清楚，應用于科研、教學、生產和檢定以及其他科學實驗的動物。這些個體具有較好的遺傳均一性、對外來刺激的敏感性和實驗再現性。一、常用實驗動物的種類和特點（一）狗(do
實驗動物外科基本操作技術
1.?切開根據實驗要求確定手術部位切口的大小。切開時先繃緊皮膚,將刀刃與皮膚垂直,用力要得當,1?次切開皮膚全層,切縫整齊而不偏斜。切開皮膚及皮下組織時,要求按解剖層次切開,盡量避開血管并注意止血,避免損傷深層的重要組織器官。2.?止血止血是手術操作中的重要環節。手術過程中止血完善與否,不僅直接影響
動物實驗的基本操作技術2
5．非純系動物(no-sheer series)一般是指任意交配繁殖的雜種動物。此類動物具有生命力旺盛、適應性強、繁殖率高、生長快、易于飼養管理等優點。其缺點是個體差異大、反應性不規則、實驗結果的重復性差。由于其中包含有最敏感的與最不敏感的兩種極端的個體，因此適用于篩選性實驗。雜種動物比較經濟、教學
狗的抓取與固定實驗
實驗材料 狗儀器、耗材 繩子實驗步驟 實驗第一個步驟就是捆綁狗嘴，要提防被咬。對于馴服的狗，可以從側面靠近輕輕撫摸其項背部皮毛，然后用固定帶迅速綁住其嘴，在上頜打一個結，再繞回下頜打第二個結，然后引至后頸項部打第三個結（圖1）。對于未經馴服的狗，可使用狗頭鉗夾住其頸部，將狗按倒在地，再綁其嘴或靜脈麻
狗的抓取與固定實驗
實驗材料狗儀器、耗材繩子實驗步驟實驗第一個步驟就是捆綁狗嘴，要提防被咬。對于馴服的狗，可以從側面靠近輕輕撫摸其項背部皮毛，然后用固定帶迅速綁住其嘴，在上頜打一個結，再繞回下頜打第二個結，然后引至后頸項部打第三個結（圖1）。圖1對于未經馴服的狗，可使用狗頭鉗夾住其頸部，將狗按倒在地，再綁其嘴或靜脈麻醉
蛙的抓取與固定實驗
在捉拿蟾蜍時勿碰壓耳側的毒腺，提防毒液射入眼中。用左手將蛙握住，以中指、無名指和小指壓住其左腹側和后肢，拇指和食指分別壓住右、左前肢，右手進行操作（圖1）。也可用固定釘將蛙固定在蛙板上（圖2）。圖1圖2
家兔的抓取與固定實驗
實驗材料家兔實驗步驟家兔易于馴服，一般不會咬人，但腳爪較銳利。抓取時切記忌強抓兔的耳朵、腰部或四肢。當兔在籠內安靜下來時，打開籠門，用右手抓住頸部的被毛和皮膚，輕輕把動物提起，把兔拉至籠門口，頭朝外，然后迅速用左手托起兔的臀部，給家兔以舒適安全感（圖1）。按實驗要求，可采取用手、兔臺或兔盒固定。圖1
蛙的抓取與固定實驗
實驗材料蛙儀器、耗材動物手術臺實驗步驟在捉拿蟾蜍時勿碰壓耳側的毒腺，提防毒液射入眼中。用左手將蛙握住，以中指、無名指和小指壓住其左腹側和后肢，拇指和食指分別壓住右、左前肢，右手進行操作（圖1）。也可用固定釘將蛙固定在蛙板上（圖2）。圖1圖2展
家兔的抓取與固定實驗
家兔易于馴服，一般不會咬人，但腳爪較銳利。抓取時切記忌強抓兔的耳朵、腰部或四肢。當兔在籠內安靜下來時，打開籠門，用右手抓住頸部的被毛和皮膚，輕輕把動物提起，把兔拉至籠門口，頭朝外，然后迅速用左手托起兔的臀部，給家兔以舒適安全感（圖1）。按實驗要求，可采取用手、兔臺或兔盒固定。圖1（1）用手固定：如須
實驗動物捉拿、固定
捉拿和保定是動物實驗操作技術中最基本最簡單而又很重要的一項基本功。捉拿和保定各種動物的原則是：保證實驗人員的安全，防止動物意外性損傷，禁止對動物采取粗暴動作。動物一般都是害怕陌生人接觸其身體的，對于非條件性的各種剌激則更是進行防御性反抗。在捉拿、保定時，首先應慢慢友好地接近動物，并注意觀察其表情，讓
實驗動物捉拿、固定
捉拿和保定是動物實驗操作技術中最基本最簡單而又很重要的一項基本功。捉拿和保定各種動物的原則是：保證實驗人員的安全，防止動物意外性損傷，禁止對動物采取粗暴動作。動物一般都是害怕陌生人接觸其身體的，對于非條件性的各種剌激則更是進行防御性反抗。在捉拿、保定時，首先應慢慢友好地接近動物，并注意觀察其表情，讓
動物實驗基本技術2
第五節 實驗動物的采血法實驗研究中，經常要采集實驗動物的血液進行常規質量檢測、細胞學實驗或進行生物化學分析，故必須掌握正確的采集血液的技術。采血方法的選擇，主要決定于實驗的目的和所需血量以及動物種類。一、大鼠、小鼠的采血方法(一)剪尾采血：需血量很少時常用本法，如作紅、白細胞計數、血紅蛋白測定、制作
動物實驗基本技術3
第七節 實驗動物的處死當實驗中途停止或結束時，實驗者應站在實驗動物的立場上以人道的原則去處置動物，原則上不給實驗動物任何恐怖和痛苦，也就是要施行安樂死。安樂死是指實驗動物在沒有痛苦感覺的情況下死去。實驗動物安樂死方法的選擇取決于動物的種類與研究的課題。一、蛙 類常用金屬探針插入枕骨大孔,破壞腦脊髓的
動物實驗基本技術2
第三節 實驗動物的麻醉方法麻醉(anesthesia)的基本任務是消除實驗過程中所至的疼痛和不適感覺，保障實驗動物的安全，使動物在實驗中服從操作，確保實驗順利進行。一、常用的麻醉藥(一)常用局部麻醉劑：普魯卡因，此藥毒性小，見效快，常用于局部浸潤麻醉，用時配成0.5％～1％；利多卡因，此藥見效快，組
動物實驗基本技術1
第一節 實驗動物的抓取和固定在進行實驗時，為了不損傷動物的健康，不影響觀察指標，并防止被動物咬傷，首先要限制動物的活動，使動物處于安靜狀態，工作人員必須掌握合理的抓取固定方法。抓取動物前，必須對各種動物的一般習性有所了解。操作時要小心仔細、大膽敏捷、熟練準確、不能粗暴，不能恐嚇動物，同時，要愛惜動物
動物實驗基本技術1
第一節 實驗動物的抓取和固定在進行實驗時，為了不損傷動物的健康，不影響觀察指標，并防止被動物咬傷，首先要限制動物的活動，使動物處于安靜狀態，工作人員必須掌握合理的抓取固定方法。抓取動物前，必須對各種動物的一般習性有所了解。操作時要小心仔細、大膽敏捷、熟練準確、不能粗暴，不能恐嚇動物，同時，要愛惜動物
動物實驗基本技術3
第七節 實驗動物的處死當實驗中途停止或結束時，實驗者應站在實驗動物的立場上以人道的原則去處置動物，原則上不給實驗動物任何恐怖和痛苦，也就是要施行安樂死。安樂死是指實驗動物在沒有痛苦感覺的情況下死去。實驗動物安樂死方法的選擇取決于動物的種類與研究的課題。一、蛙 類常用金屬探針插入枕骨大孔,破壞腦脊髓的
動物實驗基本技術4
三、實驗動物的準備本文主要敘述制備轉基因鼠的實驗程序。(一)不育雄性公鼠:結扎公鼠與母鼠交配以后產生假孕母鼠。受結扎的公鼠需8周以上，對種系無特殊要求。在正式實驗前，結扎公鼠需與性成熟的雌性小鼠交配，反復交配兩次或三次，經檢查雌體有陰道栓，但均不懷孕產仔，則證明結扎成功。結扎公鼠使母鼠產生陰道栓的能
動物實驗基本技術2
第三節 實驗動物的麻醉方法 麻醉(anesthesia)的基本任務是消除實驗過程中所至的疼痛和不適感覺，保障實驗動物的安全，使動物在實驗中服從操作，確保實驗順利進行。 一、常用的麻醉藥 (一)常用局部麻醉劑：普魯卡因，此藥毒性小，見效快，常用于局部浸潤麻醉，用時配成0.5％
動物實驗基本技術2
第五節 實驗動物的采血法實驗研究中，經常要采集實驗動物的血液進行常規質量檢測、細胞學實驗或進行生物化學分析，故必須掌握正確的采集血液的技術。采血方法的選擇，主要決定于實驗的目的和所需血量以及動物種類。一、大鼠、小鼠的采血方法(一)剪尾采血：需血量很少時常用本法，如作紅、白細胞計數、血紅蛋白測定、制作
動物實驗基本操作之五“分組與編號”
動物實驗之前，必須對實驗動物進行隨機分組和編號標記，這是做好實驗和實驗記錄的前提。一、隨機分組（一）當分為二組時例：設有雄性Wistar大鼠12只，按體重大小依次編為1，2，3，…，12號，試用完全隨機的方法，分為甲、乙兩組。分組方法：假設所產生的點是隨機數字表上第21行第31列的78，則從78開始
動物實驗與動物儀器
一、動物實驗的主要目的 醫療器械的動物試驗的主要目的是研究醫療器械的安全性，通常醫學研究中的動物試驗研究的主體可能是一種新診治方法和原理，或一種新的藥物的作用機理等等，它的主要研究目的是機理、有效性和安全性，這個研究可能與器械的使用存在聯系，也可能不存在聯系，且研究中可能沒有涉及到植入或與
動物實驗基本操作之四“妊娠檢查”
一、妊娠診斷雌性動物妊娠后會發生一系列的復雜變化。為了在配種以后能及時掌握雌性動物是否妊娠、妊娠的時間及胎兒和生殖器官的異常情況，采用臨床和實驗室的方法進行檢查，稱為妊娠檢查，又稱妊娠診斷（pregnancy diagnosis）。通過妊娠檢查，可以及時地對雌性動物加強護理或再次配種，以保護母體和胎