動物實驗基本操作技術之一“實驗動物抓取與固定”
（一）小鼠用右手提起小鼠尾部，放在實驗臺上，當其向前爬行時，左手抓住兩耳及頭頸部皮膚，再置小鼠于左手心，拉直四肢并用手指夾住肢體固定。右手可行注射或其它操作。小鼠固定器及固定器固定法（二）大鼠右手輕輕抓住大鼠尾部向后輕拉，左手抓緊鼠兩耳及頭頸部皮膚，并將其固定在左手中，右手可行注射或其它操作。大鼠固定器及固定器固定法（三）兔1、 正確的抓取兔的方法如下：說明：1、可傷兩腎；2、可造成皮下出血；3、可傷兩耳；4、頸部皮膚厚可抓；5、用手拖住身體。4和5為正確的方法。2、固定兔的方法依實驗需要而定。分兔臺固定、馬蹄鐵固定和立體定位儀固定等。①兔臺固定，將兔仰臥，四肢用粗線繩一端縛扎于前后肢的踝關節以上部位，兩前肢線繩在背后交叉穿過，分別固定在兔臺兩側；兩后肢左右分開，固定在兔臺尾端。兔頭可用特制的兔頭夾固定。家兔固定臺固定方法②進行頭顱部實驗時，常用馬蹄鐵或立體定位儀進行固定。先剪去兩側眼眶下部的一小塊皮毛，將馬蹄鐵兩側......閱讀全文
動物實驗基本操作技術之三“年齡的大致判斷”
一、大、小鼠1、根據形態鑒定日齡（大、小情況基本一樣）?2、根據體重鑒定日齡⑴ 小鼠日齡與體重的對應⑵ 大鼠日齡與體重的對應二、豚鼠一般老年豚鼠牙齒和趾爪長，被毛稀疏無光澤，眼神呆滯，行動遲緩。而年輕豚鼠牙齒短白，爪短軟，眼睛圓亮，行動敏捷，被毛有光澤，且緊貼身體。同樣，也可根據體重來推斷大致年齡。
動物實驗之大小鼠固定篇
相信經常與大鼠、小鼠打交道的老師都碰到過這樣的情況：大鼠、小鼠不配合，導致我們無法進行相應的操作，比如注射，采血等，又比如被大鼠、小鼠咬住了，等到回過神來，發現大鼠或者小鼠已經重重的掉到地上或者實驗臺上，諸如此類的情況相信還有很多。這些都是我們自己和我們的大鼠、小鼠的本能反應，那如何操作能讓我們
動物實驗技術2
2．于第①、②、③管內分別加乙型溶血性鏈球菌培養物、四聯球菌培養物、生理鹽水各0.5m1。 3．上述3支試管每管加入5%氯化鈣0.2ml，搖勻，置37℃水浴10min，待血液凝固，再繼續37℃水浴約30min，觀察結果。 【結果】 l．觀察時，可將小試管慢慢傾斜至30°
動物實驗技術1
實驗動物常用作病原微生物的分離和鑒定，進行動物接種實驗應選擇易感性高、健康的動物。常用的動物有小鼠、豚鼠和家兔。根據實驗要求可通過皮下、皮內、肌肉、腹腔、靜脈等途徑注射。感染動物死亡后，必要時進行尸體解剖并作病原體的檢查。一、實驗動物接種法（一）小白鼠接種法【材料】1．小白鼠。2．無菌注射器(1ml
動物實驗技術1
實驗動物常用作病原微生物的分離和鑒定，進行動物接種實驗應選擇易感性高、健康的動物。常用的動物有小鼠、豚鼠和家兔。根據實驗要求可通過皮下、皮內、肌肉、腹腔、靜脈等途徑注射。感染動物死亡后，必要時進行尸體解剖并作病原體的檢查。 一、實驗動物接種法 （一）小白鼠接種法 【
實驗動物麻醉操作講解
麻醉（Anesthesia）：從愛護動物的觀點出發，為減輕其實驗痛苦，利用物理或化學的方法，使動物的全身或局部暫時失去痛覺或痛覺遲鈍，減少動物的掙扎和保持安靜，以保證實驗操作的進行。麻醉的分類：根據麻醉范圍主要分為全身麻醉和局部麻醉，全身麻醉又分為吸入麻醉和非吸入麻醉。?1. 全身麻醉：吸入麻醉：又
實驗動物環境分類與基本要求
按照空氣凈化的控制程度,實驗動物環境分為普通環境、屏障環境和隔離環境。(1)普通環境符合實驗動物居住的基本要求,控制人員、物品和動物出入,不能完全控制傳染因子,適用于飼育普通級實驗動物。普通環境一般為單走廊專用房舍,通常分為三個區域:前區,包括檢疫室、辦公室、休息室等;控制區,包括動物飼育室或動物實
小白鼠抓取和固定實驗
實驗材料小鼠實驗步驟小白鼠較溫和，一般不會咬人，不需要戴手套捕捉，先用右手抓住鼠尾提起，置于鼠籠或實驗臺上，用左手的拇指、食指和中指抓住小鼠兩耳后項背部皮毛，以無名指及小指夾住鼠尾即可（圖1）展開
小白鼠抓取和固定實驗
實驗材料 小鼠實驗步驟 小白鼠較溫和，一般不會咬人，不需要戴手套捕捉，先用右手抓住鼠尾提起，置于鼠籠或實驗臺上，用左手的拇指、食指和中指抓住小鼠兩耳后項背部皮毛，以無名指及小指夾住鼠尾即可。
實驗動物實驗標本的采集實驗——實驗動物尿液采集
實驗材料實驗動物試劑、試劑盒水儀器、耗材收集器實驗步驟尿液的采集 常用的采集方法較多，一般在實驗前需給動物灌服一定量的水。(1) 代謝籠法：此法較常用，適用于大、小鼠。將動物放在特制的籠內。一般需收集 5 小時以上的尿液，最后取平均值。(2) 導尿法：常用于雄性兔、狗。動物輕度麻醉后，固定于手術臺上
實驗動物實驗標本的采集實驗——實驗動物腦脊液采集
實驗材料實驗動物試劑、試劑盒消毒液儀器、耗材注射器實驗步驟(1) 狗、兔腦脊液的采集：通常采取脊髓穿刺法，穿刺部位在兩髂連線中點稍下方第七腰椎間隙。動物麻醉后側臥位固定，頭尾部盡量彎向腰部，去被毛。消毒后一手固定穿刺部位的皮膚，腰穿針垂直刺入，當有落空感及動物的后肢跳動時，針已達椎管內，抽去針芯，即
實驗動物實驗標本的采集實驗——動物采血方法
實驗材料實驗動物試劑、試劑盒消毒液儀器、耗材注射器實驗步驟(1) 大鼠、小鼠的采血方法：①剪尾采血：適用于少量采血，如制作血涂片、白細胞計數等。動物麻醉后，將尾尖剪去約 5 mm, 待血液流出采集。也可用刀割破尾動脈或尾靜脈，讓血液自行流出。小鼠可每次采血約 0. 1 ml, 大鼠約 0.4 ml。
動物實驗技術：轉基因小鼠制備實驗
1、 選取7~8周齡雌性小鼠，陰道口封閉，作為供體，下午3:00左右，每只小鼠腹腔注射PMSG（10 IU）。2、 47~48小時后，每只小鼠腹腔注射HCG（0.8 IU），并與正常公鼠合籠；另取數只適齡母鼠（2月齡以上）作為受體，陰道口潮紅，與結扎公鼠合籠。3、第二天上午9:00前觀察供體、受體，
實驗動物實驗標本的采集實驗——實驗動物腹水的采集
實驗材料實驗動物試劑、試劑盒消毒液儀器、耗材注射器實驗步驟抽取大鼠、小鼠的腹水時，抓取固定動物，使動物腹部朝上，消毒皮膚，針頭在腹股溝和腹中線之間刺人腹腔，腹壓高時腹水自然流出，腹水少時可用注射器抽取。
實驗動物生理生化指標檢測操作
1. 實驗小鼠血清取材要求采血后，立即將血液放入1.5 mL離心管(不需加抗凝劑或防腐劑)。讓血液在室溫下靜置30 - 60分鐘。在相對離心力（relative centrifugal force?，RCF）14000g下離心血樣10 - 15分鐘，用移液管吸取分離血清，并轉移到干凈的離心管
動物實驗時動物的選擇
為了獲得理想的實驗結果，必須根據實驗目的選擇適宜的觀察對象，在選擇動物時，需考慮如下因素：?種屬的選擇不同種屬的動物對同一疾病病因刺激的反應程度會有很大的差異。在選擇實驗動物時，盡可能選擇對刺激因素較為敏感且與人類接近的種屬。例如在進行發熱實驗時，宜首選家兔：在進行過敏反應和變態反應實驗時，宜首選豚
實驗室實驗動物設施基本要求
(1)選址宜選在環境空氣質量及自然環境條件較好的區域。應避開自然疫源地;生產設施宜遠離可能產生交叉感染的動物飼養場所;宜遠離有嚴重空氣污染、振動或噪聲干擾的鐵路、碼頭、飛機場、交通要道、工廠貯倉、堆場等區域。動物生物安全實驗室與生活區的距離應符合“GB 19489 實驗室 生物安全通用要求”和“GB
SSI實驗動物能量代謝系統助力動物營養與健康實驗研究
動物能量代謝測量系統，主要包括大鼠代謝籠舍、氣流發生控制與切換、二次抽樣單元、氣體分析儀、數據采集器、數據記錄及分析軟件等模塊，廣泛用于營養學、呼吸生理學、轉化醫學、內分泌代謝、心血管等生物醫學科學研究。越來越多的證據表明，能量代謝率可能是人類健康狀況的一個信息性標志。在能量周轉的不同指標中，基礎（
動物免疫實驗
實驗概要將某種蛋白注射新西蘭大耳兔產生免疫反應，通過ELISA檢測免疫產生的抗體。實驗原理將抗原吸附在固相載體表面，加入抗血清，抗體和抗原在載體表面形成抗原-抗體復合物，洗去未結合抗體，然后加入辣根過氧化物酶標記的二抗（抗體的抗體），二抗與抗體結合，洗去未結合二抗，加底物顯色劑顯色，在一定波長下測定
動物免疫實驗
實驗概要將某種蛋白注射新西蘭大耳兔產生免疫反應，通過ELISA檢測免疫產生的抗體。實驗原理將抗原吸附在固相載體表面，加入抗血清，抗體和抗原在載體表面形成抗原-抗體復合物，洗去未結合抗體，然后加入辣根過氧化物酶標記的二抗（抗體的抗體），二抗與抗體結合，洗去未結合二抗，加底物顯色劑顯色，在一定波長下測定
實驗動物的外科技術及急救實驗
實驗步驟一、實驗動物常用的外科基本技術??? （一）基本操作技術???? 1.?切開 根據實驗要求確定手術切口的部位及大小。切開時先繃緊皮膚，將刀刃與皮膚垂直，用力要得當，一次切開皮膚全層，切縫整齊而不偏斜。切開皮膚及皮下組織時，一般要求按解剖層次逐層切開，注意止血，避免損傷深層的重要組織器官（圖1
實驗動物標記實驗
實驗材料 兔子 小鼠試劑、試劑盒 3%～5%苦味酸 0.5%中性品紅 2%硝酸銀實驗步驟 1. 染色法 適用于小動物，如兔子、大鼠、小鼠等。此方法是將化學藥品涂在動物的被毛上，以不同顏色來區分動物。常用的化學藥品有：3%～5%苦味酸溶液（黃色）、0.5%中性品紅（紅色）、2%硝酸銀（咖啡色）
實驗動物標記實驗
實驗材料兔子 小鼠試劑、試劑盒3%～5%苦味酸 0.5%中性品紅 2%硝酸銀實驗步驟1.?染色法 適用于小動物，如兔子、大鼠、小鼠等。此方法是將化學藥品涂在動物的被毛上，以不同顏色來區分動物。常用的化學藥品有：3%～5%苦味酸溶液（黃色）、0.5%中性品紅（紅色）、2%硝酸銀（咖啡色）。標記的原則是
嚙齒類實驗動物——實驗動物獸醫護理
實驗動物獸醫護理（上篇）上期小華介紹了很多動物福利的內容，那么實驗動物的福利該如何具體實施？隨著全球實驗動物行業的發展和規范，這中間對于獸醫的要求越來越高，起到與IACUC（實驗動物管理與使用委員會）同等重要的監督作用。這期小華將跟您聊一聊實驗動物的獸醫護理在實驗動物福利的具體施行方面應注意的問題。
藥理毒理動物實驗技術服務|實驗技術服務
測序實驗流程：藥理毒理動物實驗服務供應人elisa試劑盒、大鼠elisa試劑盒、小鼠elisa試劑盒、兔elisa試劑盒等。標本有：血清、血漿、細胞上清液、尿液、體液、灌洗液、腦脊髓、心房水、胸房水、組織等。種屬：人、大鼠、小鼠、兔子、豬、犬、猴、馬、牛、羊、雞、鴨、魚等。常用生化試劑作用： ??1
實驗動物染毒途徑和技術1
在毒理學試驗中染毒途徑的選擇，應盡可能模擬人在接觸該受試物的方式。最常用的染毒途徑為經口、經呼吸道；經皮及注射途徑。染毒的途徑和方法根據實驗目的、實驗動物種類和藥物劑型等情況確定。不同途徑的吸收速率，一般是靜脈注射>吸入>肌內注射>腹腔注射>皮下注射>經口>皮內注射>其他途徑(如經皮等)
實驗動物染毒途徑和技術2
? 實驗動物 呼吸量 最低呼吸量 靜式染毒2h可放動物數
實驗動物染毒途徑和技術4
（三)經皮膚染毒> 經皮膚染毒的目的有兩種。一種是經皮染毒毒性試驗，如經皮Lao測定常用大鼠，皮膚致癌試驗常用小鼠‘另一種是皮膚刺激和致敏試驗，皮膚刺激試驗常用兔和豚鼠，皮膚致敏試驗用豚鼠。 被毛的去除：試驗前用機械法(剪剃毛)或化學法(硫化胸或硫化鋇)脫毛。對兔和嚙6類常用的脫毛劑處方為：
實驗動物染毒途徑和技術3
經皮膚染毒的目的有兩種。一種是經皮染毒毒性試驗，如經皮Lao測定常用大鼠，皮膚致癌試驗常用小鼠‘另一種是皮膚刺激和致敏試驗，皮膚刺激試驗常用兔和豚鼠，皮膚致敏試驗用豚鼠。 被毛的去除：試驗前用機械法(剪剃毛)或化學法(硫化胸或硫化鋇)脫毛。對兔和嚙6類常用的脫毛劑處方為：①硫
實驗動物實驗標本的采集實驗
(1) 大鼠、小鼠的采血方法：①剪尾采血：適用于少量采血，如制作血涂片、白細胞計數等。動物麻醉后，將尾尖剪去約 5 mm, 待血液流出采集。也可用刀割破尾動脈或尾靜脈，讓血液自行流出。小鼠可每次采血約 0. 1 ml, 大鼠約 0.4 ml。②眼眶后靜脈叢采血：一手拇指及食指抓住鼠兩耳之