實驗概要
從海馬體中分離到神經元細胞,然后進行培養細胞以便進行其他的實驗研究。
主要試劑
解剖液
MEM
HBSS
主要設備
L-多聚賴氨酸包被的平皿或蓋玻片
實驗材料
出生24h內的乳鼠
實驗步驟
1. 用冷卻的解剖液(0℃,最高2-3℃)沖洗海馬兩次。
2. 在冷卻解剖液(2-3℃)中解剖無腦膜的海馬。
3. 加入胰蛋白酶(調整終濃度為0.25%),在15毫升Falcon管中37°處理15分鐘。一般10至20個海馬用溶液5毫升。
4. HBSS或MEM溶液洗兩次,停止消化。
5. 用1至3毫升含10%胎牛血清的MEM溶液重懸。
6. 用1000mL的微量移液器吹打混勻(10次左右)。
7. 等待1-2分鐘,待未消化的海馬組織沉至底部后,吸取已消化的細胞轉移到新的管中。向未消化的組織中加入2毫升的HBSS,并通過巴斯德管的處理直到組織完全分離,并將消化的細胞轉至同一管中。
8. 計數細胞的數量。
9. 用培養基將神經元細胞稀釋到所需濃度。將細胞移至多聚賴氨酸處理過的平皿或蓋玻片上。并依照平皿或蓋玻片的大小優化細胞數量。例如,2mL密度為300 000-400 000每毫升的細胞液,可以培養在35毫米平皿上。
10. 在沒有膠質細胞飼養層的情況下,細胞在37℃,5%二氧化碳和含10% Nu-血清的組織培養基中培養。
注意事項
1. L-多聚賴氨酸(0.1mg/ml)包被培養板后,因為對神經元有毒性,要待其干后才能接種。可以回收再利用。
2. 取腦組織時動作要盡量快,保持低溫操作。
3. 分離皮層和海馬時,盡量少殘余血管和腦膜,否則會培養大量的成纖維細胞。
4. 接種細胞后24h內勿移動,以防影響貼壁。
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