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  • 發布時間:2019-12-18 17:11 原文鏈接: 細胞培養常用設備及實驗技巧(二)

    細胞的復蘇

    細胞復蘇的原則——快速融化:必須將凍存在-196℃液氮中的細胞快速融化至37℃,使細胞外凍存時的冰晶迅速融化,避免冰晶緩慢融化時進入細胞形成再結晶,對細胞造成損害。

    具體操作

    一、實驗前準備:

    1.將水浴鍋預熱至37℃。

    2.用75%酒精擦拭紫外線照射30min的超凈工作臺臺面。

    3.在超凈工作臺中按次序擺放好消過毒的離心管、吸管、培養瓶等等。

    二、取出凍存管:

    1.根據細胞凍存記錄按標簽找到所需細胞的編號。

    2.從液氮罐中取出細胞盒,取出所需的細胞,同時核對管外的編號。

    三、迅速解凍:

    1.迅速將凍存管投入到已經預熱的水浴鍋中迅速解凍,并要不斷的搖動,使管中的液體迅速融化。

    2.約1~2min后凍存管內液體完全溶解,取出用酒精棉球擦拭凍存管的外壁,再拿入超凈臺內。

    四、平衡離心:

    用架盤天平平衡后,放入離心機中3000r/min離心3min。

    五、制備細胞懸液:

    1.吸棄上清液。

    2.向離心管內加入10ml培養液,吹打制成細胞懸液。

    六、細胞計數:

    細胞濃度以5×105/ml為宜。

    七、培養細胞

    將復合細胞計數要求的細胞懸液分裝入培養瓶內,將培養瓶放入37℃和5%CO2的培養箱內2~4小時(或者24~48小時)后換液繼續培養培養,換液的時間由細胞情況而定。

    初學者易犯錯誤:

    1.水浴鍋未預熱或者未預熱到37℃。

    2.水浴鍋內凍存管太多,導致傳熱不佳,使融化時間延長。

    3.離心前忘記平衡,導致離心機損壞和細胞丟失。

    4.一次復蘇細胞過多,忘記更換吸頭和吸管,導致細胞交叉污染。

    細胞計數

    實驗原理:當待測細胞懸液中細胞均勻分布時,通過測定一定體積懸液中的細胞的數目,即可換算出每毫升細胞懸液中細胞的細胞數目。

    具體操作:

    一、準備工作:

    取一瓶傳代的細胞,按照《傳代細胞培養(消化法)》中的傳代方法繁殖細胞,待長成單層后以被使用。

    二、細胞懸液制備:

    細胞懸液的制備方法是用0.25%的胰蛋白酶液消化、PBS液洗滌后,加入培養液(或Hanks液或PBS等平衡鹽溶液),吹打制成待測細胞懸液。


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