蛋白質分析技術(AnalyticalTechniquesforProtein)2
二、透析和超濾1.透析（Dialysis）：就是利用蛋白質分子不能通過半透膜（Semipermeable membrane）而小分子可以自由透過的性質，使蛋白質與小分子物質分開。作用：脫鹽、無機離子和小分子物質等。透析膜：動物膜、羊皮紙、火棉膠、賽璐玢或其他材料等。2.超濾（ultrafiltration）：是利用壓力和離心力，借助于超濾膜將不同分子量的物質分離的技術。Ultrafiltration的功能：純化和濃縮（同PEG，聚乙二醇）。Ultrafiltration膜：丙烯晴、醋酸纖維素、硝酸纖維素和尼龍等。第三節 蛋白質的電泳技術（electrophoresis） 一、基本原理 1. 分子的運動速度與遷移率 （1）蛋白質分子在電場中的泳動速度（v） F電場力 = (E/d) q；F阻力 = 6πrηv； 當F電場力 = F阻力時， (E/d)q = 6πrηv， v = Eq/(6πrηd)。r：分......閱讀全文
蛋白質分析技術(Analytical－Techniques－for－Protein)2
二、透析和超濾1.透析（Dialysis）：就是利用蛋白質分子不能通過半透膜（Semipermeable membrane）而小分子可以自由透過的性質，使蛋白質與小分子物質分開。作用：脫鹽、無機離子和小分子物質等。透析膜：動物膜、羊皮紙、火棉膠、賽璐玢或其他材料等。2.超濾（ultrafiltrat
蛋白質分析技術(Analytical－Techniques－for－Protein)3
六、SDS-PAGE1.SDS及SDS-PAGE（1）SDS：十二烷基硫酸鈉（sodium decyl sulfate，SDS），一種陰離子去污劑，它能以一定的比例和蛋白質結合，形成一種SDS—protein的復合物。（2）SDS- PAGE：具有SDS的PAGE，分離SDS—protein復合物，
蛋白質分析技術(Analytical－Techniques－for－Protein)1
第一節 蛋白質分離純化與鑒定的基本原理一、蛋白質的理化性質（一）蛋白質的兩性電離 pI：當蛋白質溶液處于某一pH時，蛋白質解離成正、負離子的趨勢相等，即成為兼性離子，凈電荷為0，此時的溶液的pH稱為~。 體內大多數蛋白質：pI≈pH 5.0。在pH 7.4，大多數蛋白質解離成陰離子。少數蛋白
Basic－Protein－Chemistry－Techniques
Coomassie Blue Stain:? (for gels)?1) Combine 225 ml Methanol with 225 ml ddH2O.?2) Add 0.5 grams of Coomassie Blue.?3) Just before use, add 50 ml acet
Basic－Protein－Chemistry－Techniques
實驗概要Basic Protein Chemistry Techniques實驗步驟Coomassie Blue Stain:? (for gels)?1) Combine 225 ml Methanol with 225 ml ddH2O.?2) Add 0.5 grams of Coomassi
蛋白質組技術（Proteomic－Techniques）
一、研究材料1995年，Wasinger等在第一篇蛋白質組研究文章中研究的對象為目前已知最小但能自主復制的原核微生物——支原體Mycoplasma genitalium。1996年，研究對象即擴展到單細胞真核生物——酵母以及人體正常組織及病理標本[28]，進而突破了早期人們普遍認為的“蛋白質組研
蛋白質純化(protein－purification)實用技術2
7．密度多數蛋白質的密度在1.3~1.4g/cm3之間，分級分離蛋白質時一般不常用此性質，不過對含有大量磷酸鹽或脂質的蛋白質與一般蛋白質在密度上明顯不同，可用密度梯度法離心與大部分蛋白質分離。8．基因工程構建的純化標記通過改變cDNA在被表達的蛋白的氨基端或羧基端加入少許幾個額外氨基酸，這個加入的標
電泳技術(electrophoretic－techniques)簡介2
⒈材料與試劑 醋酸纖維素膜一般使用市售商品，常用的電泳緩沖液為pH8.6的巴比妥緩沖液，濃度在0.05-0.09mol/L。⒉操作要點⑴膜的預處理：必須于電泳前將膜片浸泡于緩沖液，浸透后，取出膜片并用濾紙吸去多余的緩沖液，不可吸得過干。⑵加樣：樣品用量依樣品濃度、本身性質、染色方法及檢測方法等因素決
基因克隆技術（Gene－Cloning－Techniques）2
二、目的基因和載體的連接獲得目的基因后必須將其放在一定的載體內才能在宿主細胞內擴增或表達。目的基因與載體的連接及其后續的轉化過程習慣上稱為克隆（cloning）。由于目前很多基因都是利用PCR技術獲得，因此這里先介紹PCR產物的克隆策略，然后再介紹其他的克隆方式。（一）PCR產物的克隆策略獲得PCR
基因克隆技術（Gene－Cloning－Techniques）2
二、目的基因和載體的連接 獲得目的基因后必須將其放在一定的載體內才能在宿主細胞內擴增或表達。目的基因與載體的連接及其后續的轉化過程習慣上稱為克隆（cloning）。由于目前很多基因都是利用PCR技術獲得，因此這里先介紹PCR產物的克隆策略，然后再介紹其他的克隆方式。 （一
蛋白質提取與制備(Protein－Extraction－and－Preparation)2
三、蛋白質提取與制備具體操作方法1、原料的選擇早年為了研究的方便，盡量尋找含某種蛋白質豐富的器官從中提取蛋白質。但至目前經常遇到的多是含量低的器官或組織且量也很小，如下丘腦、松果體、細胞膜或內膜等原材料，因而對提取要求更復雜一些。原料的選擇主要依據實驗目的定。從工業生產角度考慮，注意選含量高、來源豐
Bleeding－and－intravenous－techniques－in－pigs2
Bleeding techniques for smaller pigsThis picture depicts the venous drainage in the neck of piglets.A: the cephalic vein. This drains into:B: the exte
蛋白質定量分析（Protein－determination）
Bradford 的dye-binding method 是利用Coomassie brilliant blue G-250 （CBG） 可與蛋白質結合而變色的特性來定量 （Bradford, 1976）；若試樣中的蛋白質量較多，則結合到蛋白質而變色的CBG 也多，因而呈色較深。下例是以一組
蛋白質定量分析(Protein－determination)
實驗概要本文介紹了蛋白質定量分析(Protein determination) Bradford 的dye-binding method的原理、樣品配制及操作步驟等。實驗原理Bradford ?的dye-binding method 是利用Coomassie brilliant blue G-250
蛋白質（protein）概述
蛋白質是一種復雜的有機化合物，舊稱“朊”。蛋白質這一概念最早是由瑞典化學家永斯·貝采利烏斯于1838年提出，但當時人們對于蛋白質在機體中的核心作用并不了解。1926年，詹姆斯·B·薩姆納揭示尿素酶是蛋白質，首次證明了酶是蛋白質。第一個被測序的抗原肽蛋白質是胰島素，由弗雷德里克·桑格完成，他也因此獲得
蛋白質純化(protein－purification)實用技術1
研究的最后還是要看基因表達產物,無論是用于檢測還是用于棉衣保護,都需要將表達出的蛋白質分離和純化,然而蛋白質性質各異,故純化方法不同,現共享一些基本的純化方法,以饗讀者:蛋白質的一級、二級、三級和四級結構決定了它的物理、化學、生物化學、物理化學和生物學性質，綜述了不同蛋白質之間的性質存在差異或者改變
蛋白質純化(protein－purification)實用技術3
10．非極性基團之間作用力溶質分子中的非極性基團與非極性固定相間的相互作用力（非選擇性分散力或倫敦力）大小與溶質分子極性基團與流動力相中極性分子在相反方向上相互作用力的差異進行分離。因其流動相中的置換劑是極性小于水的有機溶劑（如甲醇、乙腈、四氫呋喃等），這些有機溶劑可能使許多蛋白質分子產生不可逆的變
蛋白質沉淀(Protein－Precipitation)濃縮方法原理及詳細解析2
二．硫酸銨的使用硫酸銨中常含有少量的重金屬離子，對蛋白質巰基有敏感作用，使用前必須用H2S處理：將硫酸銨配成濃溶液，通入H2S 飽和，放置過夜，用濾紙除去重金屬離子，濃縮結晶，100℃烘干后使用。另外，高濃度的硫酸銨溶液一般呈酸性（PH=5.0左右），使用前也需要用氨水或硫酸調節至所需PH。硫酸
蛋白質抽取(protein－extraction)
蛋白質在細菌中表現后，以反復的冷凍-解凍方法打破細胞，再用硫酸銨把蛋白質沉淀下來，此步驟可以去除大部份核酸、多醣、脂質等雜物。儀器用具：恒溫震蕩培養箱37℃；高速冷凍離心機及離心管 （使用20,000 rpm離心陀）使用高速離心機要注意： 離心機及離心陀的溫度要預冷完全，相對位置的兩只離心管要平衡好
東曹生命科學將參展PITTCON－2016
東曹生命科學（Tosoh Bioscience）將于2016年3月6日-10日參加第66屆匹茲堡分析化學和光譜應用會議暨展覽會。 展位號：1828/1829 地 點：美國亞特蘭大佐治亞展覽中心 屆時，我們將展示東曹最新的液相色譜分離純化產品，并帶來以下學術報告： ●報告題目：Charac
電泳技術(electrophoretic－techniques)簡介5
三、瓊脂糖凝膠電泳法1.儀器裝置電泳室及直流電源同紙電泳。2.試劑(1)醋酸－鋰鹽緩沖液(pH3.0)取冰醋酸50ml，加水800ml混合后，用氫氧化鋰調節pH至3.0，再加水至1000ml。(2)甲苯胺藍溶液取甲苯胺藍0.1g，加水100ml使溶解。3.操作法(1)制膠取瓊脂糖約0.2g，加水10
電泳技術(electrophoretic－techniques)簡介4
各電泳法，除另有規定外，照下述方法操作。一、紙電泳法1.儀器裝置包括電泳室及直流電源兩部分。常用的水平式電泳室裝置如圖，包括兩個電泳槽A和一個可以密封的玻璃(或相應材料)蓋B；兩側的電泳槽均用有機玻璃（或相應材料）板C分成兩部分；外格裝有鉑電極(直徑0.5～0.8cm)D；里格為可放濾紙E的有機玻璃
電泳技術(electrophoretic－techniques)簡介1
電泳法，是指帶電荷的供試品（蛋白質、核苷酸等）在惰性支持介質（如紙、醋酸纖維素、瓊脂糖凝膠、聚丙烯酰胺凝膠等）中，于電場的作用下，向其對應的電極方向按各自的速度進行泳動，使組分分離成狹窄的區帶，用適宜的檢測方法記錄其電泳區帶圖譜或計算其百分含量的方法。電泳技術的基本原理和分類在電場中，推動帶電質點運
電泳技術(electrophoretic－techniques)簡介3
（三）等電聚焦電泳技術等電聚焦（isoelectric focusing，IEF）是60年代中期問世的一種利用有pH梯度的介質分離等電點不同的蛋白質的電泳技術。由于其分辨率可達0.01pH單位，因此特別適合于分離分子量相近而等電點不同的蛋白質組分。⒈IEF的基本原理 在IEF的電泳中，具有pH梯
Size－and－Shape－of－Protein－Molecules2
The sedimentation coefficient of a protein is a measure of how fast it moves through the gradient. Increasing the mass of the protein will increase it
Aseptic－Techniques
Aseptic techniques ensure that all cell culture procedures are performed to a standard that will prevent contamination from bacteria, fungi, mycoplasm
蛋白質結構預測(protein－structure－prediction)
一種生物體的基因組規定了所有構成該生物體的蛋白質，基因規定了組成蛋白質的氨基酸序列。雖然蛋白質由氨基酸的線性序列組成，但是，它們只有折疊成特定的空間構象才能具有相應的活性和相應的生物學功能。了解蛋白質的空間結構不僅有利于認識蛋白質的功能，也有利于認識蛋白質是如何執行其功能的。確定蛋白質的結構對于生物
我所發表功能蛋白質復合物發現和結構表征質譜策略綜述
近日，我所生物技術研究部生物分子結構表征新方法研究組（1822組）王方軍研究員團隊與南方科技大學田瑞軍教授團隊合作，發表了功能蛋白質復合物發現和結構表征質譜策略的綜述文章。 功能蛋白復合物的發現和結構—功能表征研究在理解和干預生物學過程中發揮著至關重要的作用。親和純化質譜（AP-MS）是發現功
膠體金標記蛋白A技術（Protein－Agold－technique,－PAg法）2
(2)0、5mol／L，pH7.4 Tris-Hcl緩沖液：Tris，60.57g，1mol／L Hcl約420m1，調pH值至7.4，最后加雙蒸水至1000m1，此為儲備液。(3)0、05mo1／L Tris緩沖生理鹽水：氯化鈉8.5-9g；0.5mo1／L，pH7.4 Tris-Hcl緩沖液10
蛋白質電泳技術2
Decrease toxicity of destain even more!The destain procedure can be made even less toxic by replacing the destaining solution completely with MilliQ w