聚合酶鏈反應的基本步驟
主要分為三大步驟:高溫變性、低溫退火、適溫延伸。分別添加引物、模板、Taq酶、dNTP和緩沖液等反應物混合,在約為95℃環境下,雙鏈DNA氫鍵斷裂解旋為單鏈;單鏈與人工設計的引物在約為60℃溫度下,按照堿基互補配對的原則相結合;并升溫到72℃左右,利用Taq酶延伸合成一條新的與模板DNA鏈互補的半保留復制鏈。......閱讀全文
聚合酶鏈反應的基本步驟
主要分為三大步驟:高溫變性、低溫退火、適溫延伸。分別添加引物、模板、Taq酶、dNTP和緩沖液等反應物混合,在約為95℃環境下,雙鏈DNA氫鍵斷裂解旋為單鏈;單鏈與人工設計的引物在約為60℃溫度下,按照堿基互補配對的原則相結合;并升溫到72℃左右,利用Taq酶延伸合成一條新的與模板DNA鏈互補的半保
反轉錄聚合酶鏈反應的操作步驟
1、從RNA（或mRNA）反轉錄合成cDNA第一鏈：2、于95℃加熱5～10min，滅活反轉錄酶，使RNA—cDNA雜交體變性，然后迅速冰浴冷卻：3、PCR擴增：方法基本同PCR。cDNA第一鏈合成方法：20ul反應液中含10xPCR擴增緩沖液，2ul；四種dNTP（10 mmol/L）2ul；RN
聚合酶鏈反應(PCR)詳細實驗操作步驟
一、實驗原理 聚合酶鏈反應(PCR)技術是在體外進行的由引物介導的酶促DNA擴增反應。PCR的原理是在模板DNA、PCR引物、四種脫氧核糖核苷酸(dNTP)及適當濃度的Mg2+存在的條件下，依賴于DNA聚合酶的體外酶促合成反應。兩個引物分別位于靶序列兩端，同兩條模板的3’端互補，由此限定擴增片
逆轉錄聚合酶鏈反應的操作步驟
1. 總RNA的提取：見相關內容。2. cDNA第一鏈的合成：試劑公司有多種cDNA第一鏈試劑盒出售，其原理基本相同，但操作步驟不一。現以GIBICOL公司提供的SuperScript Preamplification System for First Strand cDNA Synthesis 試
實時逆轉錄聚合酶鏈反應的操作步驟
1. 總RNA的提取：見相關內容。 2. cDNA第一鏈的合成：試劑公司有多種cDNA第一鏈試劑盒出售，其原理基本相同，但操作步驟不一。現以GIBICOL公司提供的SuperScript Preamplification System for First Strand cDNA Synthes
聚合酶鏈反應[PCR]實驗原理和操作步驟(1)
【實驗原理】聚合酶鏈式反應（polymerase chain reaction）即PCR技術是美國Cetus公司人類遺傳研究所的科學家K.B.Mullis于1983年發明的一種體外擴增特定基因或DNA序列的方法。PCR具有很高的特異性、靈敏度，在分子生物學、基因工程研究、某些疾病的診斷以及臨床標
聚合酶鏈反應[PCR]實驗原理和操作步驟(2)
【實驗目的】了解聚合酶鏈反應（PCR）的基本原理及其影響因素，掌握PCR的基本操作過程。[儀器]PCR儀、臺式離心機、電泳儀、電泳槽、紫外檢測儀[試劑]1、引物：用去離子水配成10 μmol /μL。2、Taq聚合酶3、10×PCR反應緩沖液（加鎂離子）4、dNTPs：四種核苷酸混合物，濃度為10m
定量聚合酶鏈反應
中文名稱定量聚合酶鏈反應英文名稱quantitative PCR;qPCR定 義將某種已知含量的DNA模板作為內標準進行PCR反應，對待測模板進行定量分析的方法。更靈敏的定量PCR是采用實時PCR方法。應用學科細胞生物學（一級學科），細胞生物學技術（二級學科）
反向聚合酶鏈反應
中文名稱反向聚合酶鏈反應英文名稱inverse PCR;iPCR定 義用于擴增已知序列的DNA旁側未知序列的方法。即先用在已知DNA序列上沒有識別位點的限制內切酶，切出包含已知DNA、而兩端帶有未知序列的區段，將切出的DNA區段環化，然后再按已知的DNA序列設計一對引物進行擴增。應用學科細胞生物學
聚合酶鏈反應的過程
標準的PCR過程分為三步：DNA變性：（90℃-96℃）：雙鏈DNA模板在熱作用下，氫鍵斷裂，形成單鏈DNA退火：（60℃-65℃）：系統溫度降低，引物與DNA模板結合，形成局部雙鏈。延伸：（70℃-75℃）：在Taq酶（在72℃左右，活性最佳）的作用下，以dNTP為原料，從引物的3′端開始以從5′
PCRSSCP（聚合酶鏈反應單鏈構象多態）實驗步驟
一. 樣品的制備1. 設計引物。用Oliga6.0對目的基因進行分析，設定引物，引物長度18-21個堿基，擴增片段以200-300bp最為合適。2. PCR擴增并檢測。根據不同的引物挑選適合的退火溫度進行PCR擴增。擴增產物用2-2.5%的瓊脂糖膠跑水平電泳檢測，上樣量3-5ul。PCR產物為 10
聚合酶鏈反應的反應特點
特異性強PCR反應的特異性決定因素為：①引物與模板DNA特異正確的結合；②堿基配對原則；③Taq DNA聚合酶合成反應的忠實性；④靶基因的特異性與保守性。其中引物與模板的正確結合是關鍵。引物與模板的結合及引物鏈的延伸是遵循堿基配對原則的。聚合酶合成反應的忠實性及TaqDNA聚合酶耐高溫性，使反應中模
聚合酶鏈反應的控制方式
PCR反應的緩沖液 提供合適的酸堿度與某些離子鎂離子濃度 總量應比dNTPs的濃度高，常用1.5mmol/L底物濃度 dNTP以等摩爾濃度配制，20～200umol/LTaqDNA聚合酶 2.5U(100ul）引物 濃度一般為0.1 ～ 0.5umol/L反應溫度和循環次數變性溫度和時間 95℃，3
反向聚合酶鏈反應的定義
中文名稱反向聚合酶鏈反應英文名稱inverse PCR;iPCR定 義用于擴增已知序列的DNA旁側未知序列的方法。即先用在已知DNA序列上沒有識別位點的限制內切酶，切出包含已知DNA、而兩端帶有未知序列的區段，將切出的DNA區段環化，然后再按已知的DNA序列設計一對引物進行擴增。應用學科細胞生物學
關于聚合酶鏈反應的概述
PCR技術是80年代中期發展起來的體外核酸擴增技術。 它具有特異、敏感、產率高、 快速、 簡便、重復性好、易自動化等突出優點。 PCR技術最早由美國Cetus公司人類遺傳研究室Kary Mullis及同事于1985年發現并研制成功的；最早的應用報道是Saiki等1985年將PCR技術應用于β-
聚合酶鏈反應克隆的原理
中文名稱聚合酶鏈反應克隆英文名稱PCR cloning定 義應用聚合酶鏈反應的技術獲得DNA分子克隆的方法。應用學科生物化學與分子生物學（一級學科），方法與技術（二級學科）
聚合酶鏈反應的污染來源
1、標本間交叉污染：標本污染主要有收集標本的容器被污染，或標本放置時，由于密封不嚴溢于容器外，或容器外粘有標本而造成相互間交叉污染；標本核酸模板在提取過程中，由于吸樣槍污染導致標本間污染；有些微生物標本尤其是病毒可隨氣溶膠或形成氣溶膠而擴散，導致彼此間的污染。2、PCR試劑的污染：主要是由于在PCR
定量聚合酶鏈反應的定義
中文名稱定量聚合酶鏈反應英文名稱quantitative PCR;qPCR定 義將某種已知含量的DNA模板作為內標準進行PCR反應，對待測模板進行定量分析的方法。更靈敏的定量PCR是采用實時PCR方法。應用學科細胞生物學（一級學科），細胞生物學技術（二級學科）
口蹄疫聚合酶鏈反應（PCR）
?20世紀90年代初，PCR技術日趨成熟，也滲入到FMD的診斷中。這一技術特異性強，靈敏度高，可檢測多種組織樣品，檢測病毒RNA的PCR方法已經成為FMDV檢測方法中的一種，PCR方法具有極高的靈敏度（其理論值為一個病毒粒子的核酸），因為它僅需要極少量的反應模板，而且可以設計多循環PCR反應。由于僅
聚合酶鏈反應原理介紹
PCR是體外酶促合成特異DNA片段的新方法，主要由高溫變性、 低溫退火和適溫延伸三個步驟反復的熱循環構成：即在高溫（95℃）下，待擴增的靶DNA雙鏈受熱變性成為兩條單鏈DNA模板；而后在低溫（37～55℃）情況下，兩條人工合成的寡核苷酸引物與互補的單鏈DNA模板結合，形成部分雙鏈；在Taq酶的最
反向聚合酶鏈反應技術
我們描述一種大聚合酶鏈反應(PCR)應用的方法，使在已知序列的核心區邊側的未知 DNA成幾何級數擴增。用適當的限制性內切裂解含核心區的DNA，以產生適合于PCR擴 增大小的片段，然后片段的末端再連接形成環狀分子。PCR的引物同源于環上核心區 的末端序列，但其方向性，使鏈的延長經過環上的未知區而不是
什么是聚合酶鏈反應？
聚合酶鏈反應或多聚酶鏈反應（Polymerase Chain Reaction，PCR），又稱無細胞克隆技術(“free bacteria”cloning technique)，是一種對特定的DNA片段在體外進行快速擴增的新方法。1985年美國PE-Cetus公司人類遺傳研究室的Mullis 等
聚合酶鏈反應的模板的制備
PCR的模板可以是DNA，也可以是RNA。模板的取材主要依據PCR的擴增對象，可以是病原體標本如病毒、細菌、真菌等。也可以是病理生理標本如細胞、血液、羊水細胞等。法醫學標本有血斑、精斑、毛發等。標本處理的基本要求是除去雜質，并部分純化標本中的核酸。多數樣品需要經過SDS和蛋白酶K處理。難以破碎的細菌
關于聚合酶鏈反應模板的介紹
單、雙鏈DNA或RNA都可以作為PCR的樣品。若起始材料是RNA，須先通過逆轉錄得到第一條cDNA。雖然PCR可以僅用極微量的樣品，甚至是來自單一細胞的DNA，但為了保證反應的特異性，還應用ng級的克隆DNA，μg水平的單拷貝染色體DNA或104拷貝的待擴增片段作為起始材料，模板可以是粗品，但不
聚合酶鏈反應的循環參數介紹
預變性模板DNA完全變性與PCR酶的完全激活對PCR能否成功至關重要，建議加熱時間參考試劑說明書，一般未修飾的Taq酶激活時間為兩分鐘。?[5]?變性步驟循環中一般95℃，30秒足以使各種靶DNA序列完全變性，可能的情況下可縮短該步驟時間。變性時間過長損害酶活性，過短靶序列變性不徹底，易造成擴增失敗
定量聚合酶鏈反應的應用特點
中文名稱定量聚合酶鏈反應英文名稱quantitative PCR;qPCR定 義將某種已知含量的DNA模板作為內標準進行PCR反應，對待測模板進行定量分析的方法。更靈敏的定量PCR是采用實時PCR方法。應用學科細胞生物學（一級學科），細胞生物學技術（二級學科）
聚合酶鏈反應的常規應用介紹
用于治療感染性疾病，腫瘤及遺傳病。感染性疾病PCR在醫學檢驗學中最有價值的應用領域就是對感染性疾病的診斷。理論上，只要樣本有一個病原體存在，PCR就可以檢測到。一般實驗室也能檢出10~100基因拷貝，而目前病原體抗原檢測方法一般需要105-7個病原體才可檢測到。PCR對病原體的檢測解決了免疫學檢測的
聚合酶鏈反應的引物設計原則
PCR反應中有兩條引物，即5′端引物和3′引物。設計引物時以一條DNA單鏈為基準（常以信息鏈為基準），5′端引物與位于待擴增片段5′端上的一小段DNA序列相同；3′端引物與位于待擴增片段3′端的一小段DNA序列互補。（1）引物設計的基本原則引物長度：15-30bp，常用為20bp左右。引物堿基：G+
聚合酶鏈反應的用途和特性
PCR反應擴增出了高的拷貝數，下一步檢測就成了關鍵。熒光素（溴化乙錠，EB）染色凝膠電泳是最常用的檢測手段。電泳法檢測特異性是不太高的，因此引物兩聚體等非特異性的雜交體很容易引起誤判。但因為其簡捷易行，成為了主流檢測方法。近年來以熒光探針為代表的檢測方法，有逐漸取代電泳法的趨勢。
聚合酶鏈反應的電泳分析
在實際工作中常采用瓊脂糖凝膠電泳。一般情況下先在電泳緩沖液或凝膠中加1%溴化乙錠（EB）（每100ml加100μl），然后將已經制備好的1%～2%瓊脂糖凝膠（用電泳緩沖液配制）放入電泳槽內，加入待測樣品10μl，同時用分子量標準品作標記。瓊脂糖濃度應按分離DNA片段的大小進行選擇，一般用1.5%