聚合酶鏈反應的用途和特性
PCR反應擴增出了高的拷貝數，下一步檢測就成了關鍵。熒光素（溴化乙錠，EB）染色凝膠電泳是最常用的檢測手段。電泳法檢測特異性是不太高的，因此引物兩聚體等非特異性的雜交體很容易引起誤判。但因為其簡捷易行，成為了主流檢測方法。近年來以熒光探針為代表的檢測方法，有逐漸取代電泳法的趨勢。......閱讀全文
聚合酶鏈反應的用途和特性
PCR反應擴增出了高的拷貝數，下一步檢測就成了關鍵。熒光素（溴化乙錠，EB）染色凝膠電泳是最常用的檢測手段。電泳法檢測特異性是不太高的，因此引物兩聚體等非特異性的雜交體很容易引起誤判。但因為其簡捷易行，成為了主流檢測方法。近年來以熒光探針為代表的檢測方法，有逐漸取代電泳法的趨勢。
DNA聚合酶的特性、用途和缺點
特性良好的熱穩定性;70℃ 2h，殘留90%活性;93℃ 2h，殘留60%活性;94℃ 2h，殘留40%活性。5'→3'聚合酶活性，對dATP有優先聚合活性;5'→3'外切酶活性;無3'→5'外切酶活性。用途聚合酶鏈反應(polymerase chai
聚合酶鏈反應剪接的原理和應用
中文名稱聚合酶鏈反應剪接英文名稱PCR splicing定 義利用聚合酶鏈反應進行基因剪接以刪除DNA中一段特定序列的方法。系設計兩組引物，先分別擴增擬刪除序列上下游兩側的序列,再用上游序列5′端引物和下游序列3′端引物用PCR反應進行連接。應用學科生物化學與分子生物學（一級學科），方法與技術（二
定量聚合酶鏈反應
中文名稱定量聚合酶鏈反應英文名稱quantitative PCR;qPCR定 義將某種已知含量的DNA模板作為內標準進行PCR反應，對待測模板進行定量分析的方法。更靈敏的定量PCR是采用實時PCR方法。應用學科細胞生物學（一級學科），細胞生物學技術（二級學科）
反向聚合酶鏈反應
中文名稱反向聚合酶鏈反應英文名稱inverse PCR;iPCR定 義用于擴增已知序列的DNA旁側未知序列的方法。即先用在已知DNA序列上沒有識別位點的限制內切酶，切出包含已知DNA、而兩端帶有未知序列的區段，將切出的DNA區段環化，然后再按已知的DNA序列設計一對引物進行擴增。應用學科細胞生物學
聚合酶鏈反應的過程
標準的PCR過程分為三步：DNA變性：（90℃-96℃）：雙鏈DNA模板在熱作用下，氫鍵斷裂，形成單鏈DNA退火：（60℃-65℃）：系統溫度降低，引物與DNA模板結合，形成局部雙鏈。延伸：（70℃-75℃）：在Taq酶（在72℃左右，活性最佳）的作用下，以dNTP為原料，從引物的3′端開始以從5′
隨機聚合酶鏈反應的原理和應用特點
中文名稱隨機聚合酶鏈反應英文名稱random PCR定 義采用許多序列不相同的(部分隨機或全部隨機序列)、短的(約10個核苷酸)引物所進行的聚合酶鏈反應。由于在模板DNA多個不同位置上擴增，所形成的產物長度各異，電泳圖譜獨特，可用于識別核酸的多態性、研究基因組的物理圖譜及分析生物的進化等。應用學科
反向聚合酶鏈反應的原理和應用特點
中文名稱反向聚合酶鏈反應英文名稱inverse PCR;iPCR定 義用于擴增已知序列的DNA旁側未知序列的方法。即先用在已知DNA序列上沒有識別位點的限制內切酶，切出包含已知DNA、而兩端帶有未知序列的區段，將切出的DNA區段環化，然后再按已知的DNA序列設計一對引物進行擴增。應用學科細胞生物學
實時聚合酶鏈反應的原理和應用特點
中文名稱實時聚合酶鏈反應英文名稱real-time PCR定 義一種定量測定樣品中特定DNA序列的聚合酶鏈反應。即使用標記(最常用是熒光標記)的PCR引物，因而能夠通過熒光監測到每一次PCR循環后擴增所得DNA產物的量，從連續監控下獲得的反應動力學曲線，可推導得樣品中被擴增模板DNA的原初含量。應
反轉錄聚合酶鏈反應的功能和特點
RT—PCR（Reverse Transcription-Polymerase Chain Reaction）是將RNA的反轉錄（RT）和cDNA的聚合酶鏈式擴增（PCR）相結合的技術。首先經反轉錄酶的作用，從RNA合成cDNA，再以cDNA為模板，在DNA聚合酶作用下擴增合成目的片段。RT—PCR
聚合酶鏈反應（PCR）技術的發展和應用1
第一節 概述 聚合酶鏈反應或多聚酶鏈反應（Polymerase Chain Reaction, PCR），又稱無細胞克隆技術(“free bacteria”cloning technique)，是一種對特定的DNA片段在體外進行快速擴增的新方法。該方法一改傳統分子克隆技術的模式，不通過活細胞，操作
聚合酶鏈反應（PCR）技術的發展和應用2
第五節 PCR各處應用模式 一、兼并引物（Degenerate Primer）PCR 密碼子具有兼并性，如表22-4，單以氨基酸順序推測編碼的DNA序列是不精確的，但可以設計成對兼并引物，擴增所有編碼已知順序的核酸序列。用兼并引物時寡核苷酸中核苷酸序列可以改變，但核苷酸的數量應相同。兼并度越低，
聚合酶鏈反應的控制方式
PCR反應的緩沖液 提供合適的酸堿度與某些離子鎂離子濃度 總量應比dNTPs的濃度高，常用1.5mmol/L底物濃度 dNTP以等摩爾濃度配制，20～200umol/LTaqDNA聚合酶 2.5U(100ul）引物 濃度一般為0.1 ～ 0.5umol/L反應溫度和循環次數變性溫度和時間 95℃，3
關于聚合酶鏈反應的概述
PCR技術是80年代中期發展起來的體外核酸擴增技術。 它具有特異、敏感、產率高、 快速、 簡便、重復性好、易自動化等突出優點。 PCR技術最早由美國Cetus公司人類遺傳研究室Kary Mullis及同事于1985年發現并研制成功的；最早的應用報道是Saiki等1985年將PCR技術應用于β-
反向聚合酶鏈反應的定義
中文名稱反向聚合酶鏈反應英文名稱inverse PCR;iPCR定 義用于擴增已知序列的DNA旁側未知序列的方法。即先用在已知DNA序列上沒有識別位點的限制內切酶，切出包含已知DNA、而兩端帶有未知序列的區段，將切出的DNA區段環化，然后再按已知的DNA序列設計一對引物進行擴增。應用學科細胞生物學
聚合酶鏈反應的反應特點
特異性強PCR反應的特異性決定因素為：①引物與模板DNA特異正確的結合；②堿基配對原則；③Taq DNA聚合酶合成反應的忠實性；④靶基因的特異性與保守性。其中引物與模板的正確結合是關鍵。引物與模板的結合及引物鏈的延伸是遵循堿基配對原則的。聚合酶合成反應的忠實性及TaqDNA聚合酶耐高溫性，使反應中模
聚合酶鏈反應克隆的原理
中文名稱聚合酶鏈反應克隆英文名稱PCR cloning定 義應用聚合酶鏈反應的技術獲得DNA分子克隆的方法。應用學科生物化學與分子生物學（一級學科），方法與技術（二級學科）
聚合酶鏈反應的污染來源
1、標本間交叉污染：標本污染主要有收集標本的容器被污染，或標本放置時，由于密封不嚴溢于容器外，或容器外粘有標本而造成相互間交叉污染；標本核酸模板在提取過程中，由于吸樣槍污染導致標本間污染；有些微生物標本尤其是病毒可隨氣溶膠或形成氣溶膠而擴散，導致彼此間的污染。2、PCR試劑的污染：主要是由于在PCR
定量聚合酶鏈反應的定義
中文名稱定量聚合酶鏈反應英文名稱quantitative PCR;qPCR定 義將某種已知含量的DNA模板作為內標準進行PCR反應，對待測模板進行定量分析的方法。更靈敏的定量PCR是采用實時PCR方法。應用學科細胞生物學（一級學科），細胞生物學技術（二級學科）
聚合酶鏈反應的基本步驟
主要分為三大步驟:高溫變性、低溫退火、適溫延伸。分別添加引物、模板、Taq酶、dNTP和緩沖液等反應物混合,在約為95℃環境下,雙鏈DNA氫鍵斷裂解旋為單鏈;單鏈與人工設計的引物在約為60℃溫度下,按照堿基互補配對的原則相結合;并升溫到72℃左右,利用Taq酶延伸合成一條新的與模板DNA鏈互補的半保
聚合酶鏈反應原理介紹
PCR是體外酶促合成特異DNA片段的新方法，主要由高溫變性、 低溫退火和適溫延伸三個步驟反復的熱循環構成：即在高溫（95℃）下，待擴增的靶DNA雙鏈受熱變性成為兩條單鏈DNA模板；而后在低溫（37～55℃）情況下，兩條人工合成的寡核苷酸引物與互補的單鏈DNA模板結合，形成部分雙鏈；在Taq酶的最
什么是聚合酶鏈反應？
聚合酶鏈反應或多聚酶鏈反應（Polymerase Chain Reaction，PCR），又稱無細胞克隆技術(“free bacteria”cloning technique)，是一種對特定的DNA片段在體外進行快速擴增的新方法。1985年美國PE-Cetus公司人類遺傳研究室的Mullis 等
口蹄疫聚合酶鏈反應（PCR）
?20世紀90年代初，PCR技術日趨成熟，也滲入到FMD的診斷中。這一技術特異性強，靈敏度高，可檢測多種組織樣品，檢測病毒RNA的PCR方法已經成為FMDV檢測方法中的一種，PCR方法具有極高的靈敏度（其理論值為一個病毒粒子的核酸），因為它僅需要極少量的反應模板，而且可以設計多循環PCR反應。由于僅
反向聚合酶鏈反應技術
我們描述一種大聚合酶鏈反應(PCR)應用的方法，使在已知序列的核心區邊側的未知 DNA成幾何級數擴增。用適當的限制性內切裂解含核心區的DNA，以產生適合于PCR擴 增大小的片段，然后片段的末端再連接形成環狀分子。PCR的引物同源于環上核心區 的末端序列，但其方向性，使鏈的延長經過環上的未知區而不是
關于聚合酶鏈反應引物的量和TaqDNA聚合酶的量的介紹
（一）引物的量 引物在PCR反應中的濃度一般在0.1～1μmol/L之間。濃度過高易形成引物二聚體且產生非特異性產物。一般來說用低濃度引物經濟、特異，但濃度過低，不足以完成30個循環的擴增反應，則會降低PCR的產率。 （二）TaqDNA聚合酶的量 典型PCR反應混合物中，所用酶濃度為2.5
聚合酶鏈反應的模板的制備
PCR的模板可以是DNA，也可以是RNA。模板的取材主要依據PCR的擴增對象，可以是病原體標本如病毒、細菌、真菌等。也可以是病理生理標本如細胞、血液、羊水細胞等。法醫學標本有血斑、精斑、毛發等。標本處理的基本要求是除去雜質，并部分純化標本中的核酸。多數樣品需要經過SDS和蛋白酶K處理。難以破碎的細菌
剪接重疊延伸聚合酶鏈反應的原理和應用特點
中文名稱剪接重疊延伸聚合酶鏈反應英文名稱splicing overlapping extension PCR;SOE-PCR定 義利用一系列聚合酶鏈反應，使產物兩端彼此重疊，以便剪接成長片段，其間越過某段序列可使之缺失的PCR方法。一些基因工程抗體就是用此法制備的。應用學科生物化學與分子生物學（一
聚合酶鏈反應[PCR]實驗原理和操作步驟(2)
【實驗目的】了解聚合酶鏈反應（PCR）的基本原理及其影響因素，掌握PCR的基本操作過程。[儀器]PCR儀、臺式離心機、電泳儀、電泳槽、紫外檢測儀[試劑]1、引物：用去離子水配成10 μmol /μL。2、Taq聚合酶3、10×PCR反應緩沖液（加鎂離子）4、dNTPs：四種核苷酸混合物，濃度為10m
聚合酶鏈反應[PCR]實驗原理和操作步驟(1)
【實驗原理】聚合酶鏈式反應（polymerase chain reaction）即PCR技術是美國Cetus公司人類遺傳研究所的科學家K.B.Mullis于1983年發明的一種體外擴增特定基因或DNA序列的方法。PCR具有很高的特異性、靈敏度，在分子生物學、基因工程研究、某些疾病的診斷以及臨床標
聚合酶鏈反應的循環參數介紹
預變性模板DNA完全變性與PCR酶的完全激活對PCR能否成功至關重要，建議加熱時間參考試劑說明書，一般未修飾的Taq酶激活時間為兩分鐘。?[5]?變性步驟循環中一般95℃，30秒足以使各種靶DNA序列完全變性，可能的情況下可縮短該步驟時間。變性時間過長損害酶活性，過短靶序列變性不徹底，易造成擴增失敗