DNA純化手冊2
Key points to observe: a. Use a endA1- E. coli strain for plasmid propagation and isolation whenever possible. The instability of plasmids isolated from endA l + bacterial strains has been reported (Schoenfield et al., 1995). b. Do not vortex, shake or incubate for more than 5 min in step 3. This may cause shearing of genomic DNA and/or linerization (or unravelli......閱讀全文
DNA純化手冊1
Purification of plasmid DNA (miniprep) with high yields using diatomaceous earthKyung-Soo Kim and Charles K. PallaghySchool of Botany, La Trobe Univer
DNA純化手冊2
Key points to observe:?a. Use a?endA1-?E. coli?strain for plasmid propagation and isolation whenever possible.?The instability of plasmids isolated fr
純化DNA實驗
實驗材料 細胞試劑、試劑盒 TBS抽提緩沖液儀器、耗材 離心管實驗步驟 1. 根據樣品類型，從下列方法中選一個作為步驟 1 進行操作。(1) 細胞樣品① 單層培養的細胞以用冰預冷的 TBS 將單層細胞洗滌 2 次，用刮棒把細胞刮入約 0.5 ml 的 TBS 中，將細胞懸液轉移到冰浴的離心管中，
純化DNA實驗
從哺乳動物細胞或組織分離DNA 基因組DNA的快速純化 純化質粒（堿裂解法） ? ? ? ? ? ? 實驗材料 細胞
DNA純化實驗
實驗方法原理 硅膠膜可在高鹽條件下結合DNA，又可在低鹽條件下與DNA分離。用于清潔目的的含DNA溶液中的引物、單核苷酸、酶、礦物油、鹽離子等雜質因為沒有與DNA相似的特性，所以被分離開來。實驗材料?PCR產物試劑、試劑盒?PCR清潔試劑盒儀器、耗材?96孔DNA制備板96孔深孔板96孔V型底板實驗
純化DNA實驗
從哺乳動物細胞或組織分離DNA 基因組DNA的快速純化 純化質粒（堿裂解法） ? ? ? ? ? ? 實驗材料 細胞
DNA純化實驗
PCR清潔試劑盒純化法 ? ? ? ? ? ? 實驗方法原理 硅膠膜可在高鹽條件下結合DNA，又可在低鹽條件下與DNA分離。用于清潔目的的含DNA溶液中的引物、單核苷酸、酶、礦物油
純化DNA實驗_基因組DNA的快速純化
試劑、試劑盒尾部緩沖液蛋白酶 K儀器、耗材離心管玻璃棒實驗步驟第 1 天1. 大約 1.5 cm 長的尾部活檢樣品放在一個 1.5 ml 盛有 0.7 ml 尾部緩沖液的小離心管中，加 35 ul 10 mg/ml 蛋白酶 K，在 55℃ 振搖溫育過夜。尾部緩沖液（配 25 ml）50 mmol/L
細菌蛋白提取與純化的實驗手冊
不同的蛋白質分離純化的方法不同，但蛋白質分離純化的操作步驟基本類似，那么如何進行細菌蛋白的提取呢？這里總結細菌蛋白的提取的實驗試劑、操作步驟以及一些注意事項。實驗試劑采用T7? Tag Affinity Purification KitT7?Tag抗體瓊脂。B/W緩沖液：4.29mM Na2HPO4
DNA純化實驗——DNA凝膠回收試劑盒純化法
DNA純化可用于：（1）獲得高純度的DNA；（2）濃縮DNA；（3）測序、遺傳信息分析等分子生物學應用。實驗方法原理本試劑盒適合從各種瓊脂糖凝膠中提取多至 8 μg DNA（70 bp-10 Kb），回收率為 60-85%。瓊脂糖凝膠在溫和的緩沖液(DE-A 溶液)中溶解，其中的保護劑能防止線狀 D
質粒DNA的純化
聚乙二醇沉淀法質粒DNA氯化銫-溴化乙錠梯度平衡離心法純化閉環DNA(一)聚乙二醇沉淀法提取質粒DNA1)將核酸溶液所得]轉入15mlCorex 管中，再加3ml 用冰預冷的5mol/L LiCl溶液，充分混勻，用合適轉頭于4℃下以10 000轉/分離心10分鐘。LiCl可沉淀高分子RNA。2)將上
MinElute－DNA純化技術
?? 作分子生物學實驗，核酸純化、酶切、克隆算是最基本的步驟了。因為要做定向克隆，通常要作雙酶切。為了省時省事兒，我們常常想方設法把兩個酶放在一起切。可是事情并非總那么稱心如意——兩個酶經常在一起鬧別扭，不是反應溫度不同啦，就是Buffer不同，有時候兩個酶切位點連在一起，必須先切一個再切另一個，否
DNA純化的方法
DNA純化首先利用瓊膠電泳將不同分子量的DNA片段分開,將某一特定分子量區域的瓊膠切下,利用DNA extraction kit將DNA從瓊膠中溶出并濃縮.實驗材料( 6X gel-loading dye:15% Ficoll 400, 0.25% bromophenol blue,0.25% xy
DNA純化的方法
DNA純化首先利用瓊膠電泳將不同分子量的DNA片段分開,將某一特定分子量區域的瓊膠切下,利用DNA extraction kit將DNA從瓊膠中溶出并濃縮.實驗材料( 6X gel-loading dye:15% Ficoll 400, 0.25% bromophenol blue,0.25% xy
純化DNA實驗_純化質粒（堿裂解法）
實驗材料大腸桿菌試劑、試劑盒LB葡萄糖緩沖液乙酸鉀儀器、耗材離心管實驗步驟1. 單個大腸桿菌克隆接種到 2 ml 含適當抗生素的 LB 中。37℃ 劇烈振蕩孵育 5~8 小時。或者可以培養過夜使飽和。2. 倒 1.5 ml 培養液到已作標記的微量離心管中。把剩下的培養液存放在 4℃。3. 在微量離心
如何進行DNA純化
檢測：用足跡法，又稱為足印法（footprinting）是一種用來測定DNA-蛋白質專一性結合的方法。用于檢測與特定蛋白質結合 的DNA序列的部位,可展示蛋白質因子同特定DNA片段之間的結合區域。其原理為：DNA和蛋白質結合以后便不會被DNAase分解，在測序時便出現空白區(即蛋白質結合區)，從而了
DNA的提取和純化
1 DNA提取⑴ 新鮮外周靜脈血3~5ml，以ACD（檸檬酸納緩沖液）1/7體積抗凝；⑵ 3500rpm 15分鐘離心，吸除上層血漿；⑶ 加5倍體積蒸餾水（滅菌），搖勻，靜置5~10分鐘，3500rpm15分鐘離心，去上清，（若沉淀不夠，可重復1~2次）；⑷ 吸取沉淀（少許液體）放入1.5ml離心管
DNA提取純化技術概述
質粒DNA的提取與純化質粒是一類雙鏈、閉環的DNA，大小范圍從1 kb至200 kb以上不等。通常情況下，質粒可持續穩定地處于染色體外的游離狀態，具有自主復制功能；但在一定條件下也會可逆地整合到宿主染色體上，隨著染色體的復制而復制，并通過細胞分裂傳遞到后代。?質粒已成為核酸克隆和測序最常用的載體。質
DNA片段回收與純化
????質粒、噬菌體等經酶切，電泳；PCR產物經電泳后，常常需要對一些DNA電泳片段進行回收和純化，用于亞克隆、探針標記等。DNA回收和純化常用方法有壓碎法、低融點瓊脂糖法、凍融法等，也有現成的試劑盒供應。一、凍融法1.??紫外燈下仔細切下含待回收DNA的膠條，將切下的膠條（小于0.6g）搗碎，置于
DNA純化去雜質實驗
這周我們來討論一項常用的技術，即使常用但仍引起部分人核酸分離焦慮癥。那就是基因組DNA的純化去雜質。場景是這樣的：你有一份采自南太平洋中部一個偏僻小島上首次發現的古老蘭花品種根際土壤樣品。你使用了非PowerSoil Kit法提取其中的微生物DNA。最終DNA含有太多雜質，無法PCR擴增。因此需要去
DNA提取純化新技術淺談——核酸電泳純化技術
核酸的提取和純化是法醫DNA物證檢驗的關鍵技術之一，目前實驗室最常用的方法包括核酸純化柱（Spin column）磁珠法和clean-up系統，磁珠法由于操作簡便、快速，能夠提取到高純度的核酸DNA,并且可以自動化，因此成為目前法醫DNA實驗室核酸提取純化的主要手段。但磁珠法由于磁珠吸附DN
DNA純化實驗——PCR清潔試劑盒純化法
實驗方法原理硅膠膜可在高鹽條件下結合DNA，又可在低鹽條件下與DNA分離。用于清潔目的的含DNA溶液中的引物、單核苷酸、酶、礦物油、鹽離子等雜質因為沒有與DNA相似的特性，所以被分離開來。?實驗材料PCR產物試劑、試劑盒PCR清潔試劑盒儀器、耗材96孔DNA制備板96孔深孔板96孔V型底板實驗步驟一
重組DNA的分離、克隆與測序實驗手冊
?edited by??????????????? Bruce A. Roe??????????????? Judy S. Crabtreeand Akbar S. KhanDepartment of Chemistry and Biochemistry??????????????? The Uni
微量柱法純化DNA片段
實驗概要目的DNA片段的回收技術是重組DNA中的關鍵技術，回收是指從電泳介質中純化出目的片斷。目前待回收的片斷主要有酶切片斷和各種PCR片斷；回收的介質主要有瓊脂糖和PAGE；回收的方法主要有樹脂回收、微量柱回收、玻璃奶回收、液氮凍凍融回收及透析袋大量回收等，下面分別介紹樹脂、微量柱及液氮凍凍融回收
標本DNA的分離與純化
用5-10ml 1xNTE(NaCl 100mmol/L ,Tris-HCl 10mmol/l pH7.4，EDTa 1mmol/L pH8.0)調整細胞為2×107個（組織應切碎置液氮冰凍，高速攪切成粉末后，加入緩沖液）。加1/10-1/20體積（V）10mg/ml蛋白酶（Sigma Ⅷ型），
DNA的純化濃縮與定量
實驗目的 將復雜的細胞分子混合物加入有機溶媒萃取以除去蛋白質及其它成分，就可以純化DNA。一般常用酚及氯仿(phenol/chloroform)可使蛋白質變性(denaturaion)的特性來進行萃取的步驟，DNA和RNA不溶于有機溶媒中，而溶于水層。另外，分子選殖(molecular clon
質粒DNA的提取與純化
一、實驗目的與原理質粒多為一些雙鏈、環狀的DNA分子，是獨立于細菌染色體之外進行復制和遺傳的輔助性遺傳單位。質粒是進行分子生物學實驗操作，進行遺傳工程改良物種等工作時最主要的DNA載體。提取質粒的基本步驟分為三步：①細菌的培養和質粒的擴增，②細菌菌體的裂解，③質粒DNA的純化。本實驗采取的菌體裂解方
柱離心法純化質粒DNA
實驗原理1. 離心柱結構：特殊硅基質吸附材料，特異性吸附DNA，而RNA與蛋白質穿過。在正常情況下，核酸表面覆蓋了一層由水分子組成的親水薄膜，以維持其水溶性。高濃度鹽離子的加入破壞了核酸表面親水薄膜的相對有序排列，形成了疏水環境。在此環境中，核酸與硅膠膜能有效結合，而蛋白質、代謝產物和其他污染物則不
質粒DNA的制備和純化
實驗概要質粒（plasmid）是一種染色體外的穩定遺傳因子，大小從1~200kb不等，為雙鏈、閉環的DNA分子，并以超螺旋狀態存在于宿主細胞中。質粒主要發現于細菌、放線菌和真菌細胞中，它具有自主復制和轉錄能力，能在子代細胞中保持恒定的拷貝數，并表達所攜帶的遺傳信息。質粒在細胞內的復制一般有兩種類型：
柱離心法純化質粒DNA
實驗概要本實驗介紹了柱離心法純化質粒DNA的原理及操作流程。實驗原理1. 離心柱結構：特殊硅基質吸附材料，特異性吸附DNA，而RNA與蛋白質穿過。在正常情況下，核酸表面覆蓋了一層由水分子組成的親水薄膜，以維持其水溶性。高濃度鹽離子的加入破壞了核酸表面親水薄膜的相對有序排列，形成了疏水環境。在此環境中